Nature.com сайтына кіргеніңіз үшін рахмет. Сіз пайдаланып жатқан шолғыш нұсқасында шектеулі CSS қолдауы бар. Жақсы нәтижелерге қол жеткізу үшін жаңарақ шолғышты пайдалануды ұсынамыз (немесе Internet Explorer шолғышында үйлесімділік режимін өшіру). Әзірше, үздіксіз қолдауды қамтамасыз ету үшін біз сайтты стильсіз және JavaScriptсіз көрсетеміз.
Қара сарбаз шыбын (Hermetia illucens, L. 1758) - көмірсуларға бай органикалық жанама өнімдерді пайдалану үшін жоғары әлеуеті бар, бәрін жейтін зиянды жәндік. Көмірсулардың ішінде қара солдат шыбындары өсу және липидтердің синтезі үшін еритін қанттарға сүйенеді. Бұл зерттеудің мақсаты қарапайым еритін қанттардың қара солдат шыбындарының дамуына, өмір сүруіне және май қышқылдарының профиліне әсерін бағалау болды. Тауық азығын моносахаридтермен және дисахаридтермен бөлек толықтырыңыз. Бақылау құралы ретінде целлюлоза пайдаланылды. Глюкоза, фруктоза, сахароза және мальтозамен қоректенетін дернәсілдер бақылаушы дернәсілдерге қарағанда тез өсті. Керісінше, лактоза дернәсілдерге қоректенуге қарсы әсер етіп, өсуді баяулатады және соңғы жеке дене салмағын азайтты. Дегенмен, барлық еритін қанттар личинкаларды бақылау диетасымен қоректенетіндерге қарағанда майлы етті. Атап айтқанда, сыналған қанттар май қышқылдарының профилін қалыптастырды. Мальтоза мен сахароза целлюлозамен салыстырғанда қаныққан май қышқылдарының құрамын арттырды. Керісінше, лактоза диетадағы қанықпаған май қышқылдарының биожинақталуын арттырды. Бұл зерттеу еритін қанттың қара сарбаз шыбынының дернәсілдерінің май қышқылдарының құрамына әсерін көрсететін бірінші зерттеу болып табылады. Біздің нәтижелеріміз сыналған көмірсулардың қара сарбаз шыбындарының личинкаларының май қышқылдарының құрамына айтарлықтай әсер ететінін және сондықтан олардың соңғы қолданылуын анықтай алатынын көрсетеді.
Энергия мен жануар ақуызына жаһандық сұраныс артып келеді1. Жаһандық жылыну жағдайында өндірісті ұлғайта отырып, қазба энергиясы мен дәстүрлі азық-түлік өндіру әдістеріне жасыл баламаларды табу өте маңызды. Жәндіктер дәстүрлі мал шаруашылығымен салыстырғанда химиялық құрамы мен қоршаған ортаға әсерінің төмен болуына байланысты осы мәселелерді шешуге үміттенетін үміткерлер болып табылады2. Жәндіктердің ішінде осы мәселелерді шешуге тамаша үміткер - қара сарбаз шыбыны (BSF), Hermetia illucens (L. 1758), әртүрлі органикалық субстраттармен қоректенуге қабілетті зиянды түр. Сондықтан бұл субстраттарды BSF өсіру арқылы бағалау әртүрлі салалардың қажеттіліктерін қанағаттандыру үшін жаңа шикізат көзін құруы мүмкін.
BSF личинкалары (BSFL) ауылшаруашылық және агроөнеркәсіптік қосымша өнімдермен қоректенеді, мысалы, сыра қайнатушылардың дәндері, көкөніс қалдықтары, жеміс целлюлозасы және ескірген нан, олар көмірсулардың (CH) 4,5 жоғары болуына байланысты BSFL өсуіне әсіресе қолайлы, 6 мазмұны. BSFL-ді кең көлемде өндіру нәтижесінде екі өнім түзіледі: нәжіс, субстрат қалдықтарының қоспасы және өсімдік өсіру үшін тыңайтқыш ретінде қолдануға болатын нәжіс7 және негізінен белоктардан, липидтерден және хитиннен тұратын дернәсілдер. Белоктар мен липидтер негізінен мал шаруашылығында, биоотын мен косметикада қолданылады8,9. Хитинге келетін болсақ, бұл биополимер аграрлық-азық-түлік секторында, биотехнологияда және денсаулық сақтауда қолданылады10.
BSF аутогендік голометаболды жәндік болып табылады, яғни оның метаморфозы мен көбеюі, әсіресе жәндіктердің өмірлік циклінің энергияны қажет ететін кезеңдері дернәсілдердің өсуі кезінде пайда болатын қоректік заттар қорымен толығымен қамтамасыз етілуі мүмкін11. Нақтырақ айтқанда, ақуыз және липидтердің синтезі BSF-тің қоректенбейтін фазаларында энергия бөлетін маңызды сақтау органы - май денесінің дамуына әкеледі: препупа (яғни, BSF личинкалары қоректену және іздеу кезінде қара түске айналатын соңғы личинка кезеңі. метаморфозға қолайлы орта үшін), қуыршақ (яғни, жәндік метаморфозға ұшырайтын қозғалмайтын кезең) және ересектер 12,13. CH BSF14 диетасындағы негізгі энергия көзі болып табылады. Бұл қоректік заттардың ішінде гемицеллюлоза, целлюлоза және лигнин сияқты талшықты CH, дисахаридтер мен полисахаридтерден (мысалы, крахмал) BSFL15,16 арқылы қорытыла алмайды. СН-ның қорытылуы көмірсулардың сіңуінің маңызды бастапқы кезеңі болып табылады, олар ақырында ішекте қарапайым қантқа дейін гидролизденеді16. Содан кейін қарапайым қанттар сіңірілуі мүмкін (яғни, ішектің перитрофиялық мембранасы арқылы) және энергияны өндіру үшін метаболизденеді17. Жоғарыда айтылғандай, личинкалар майлы денеде артық энергияны липидтер түрінде сақтайды12,18. Сақтау липидтері диеталық қарапайым қанттардан дернәсілдер синтездейтін триглицеридтерден (глицериннің бір молекуласынан және үш май қышқылдарынан түзілетін бейтарап липидтерден) тұрады. Бұл CH май қышқылы синтаза және тиоэстераза жолдары арқылы май қышқылы (FA) биосинтезіне қажетті ацетил-КоА субстраттарын қамтамасыз етеді19. H. illucens липидтерінің май қышқылдарының профилінде табиғи түрде лаурин қышқылының (C12:0) жоғары үлесі бар қаныққан май қышқылдары (SFA) басым болады19,20. Сондықтан липидтердің жоғары мөлшері мен май қышқылдарының құрамы мал азығында, әсіресе полиқанықпаған май қышқылдары (ҚҚҚҚ) қажет болатын аквакультурада тұтас дернәсілдерді пайдалануды тез шектейтін факторларға айналуда21.
BSFL органикалық қалдықтарды азайту әлеуеті ашылғаннан бері әртүрлі жанама өнімдердің құндылығы бойынша зерттеулер BSFL құрамы ішінара оның диетасымен реттелетінін көрсетті. Қазіргі уақытта H. illucens FA профилін реттеу жақсаруын жалғастыруда. BSFL-нің PUFA биожинақтау қабілеті балдырлар, балық қалдықтары немесе зығыр тұқымы сияқты тағамдар сияқты PUFA-ға бай субстраттарда көрсетілді, бұл жануарларды тамақтандыру үшін жоғары сапалы FA профилін қамтамасыз етеді19,22,23. Керісінше, PUFA-мен байытылмаған жанама өнімдер үшін диеталық FA профильдері мен дернәсілдік FA арасында әрқашан корреляция болмайды, бұл басқа қоректік заттардың әсерін көрсетеді24,25. Шын мәнінде, сіңімді CH-ның FA профильдеріне әсері әлі де аз зерттелген және аз зерттелген24,25,26,27.
Біздің білуімізше, жалпы моносахаридтер мен дисахаридтер H. illucens рационында көп болғанымен, H. illucens қоректенуінде олардың қоректік рөлі аз зерттелген. Бұл зерттеудің мақсаты олардың BSFL тамақтануына және липидтердің құрамына әсерін анықтау болды. Біз әр түрлі қоректену жағдайында дернәсілдердің өсуін, өмір сүруін және өнімділігін бағалаймыз. Содан кейін CH-ның BSFL тағамдық сапасына әсерін көрсету үшін әрбір диетаның липидті мазмұны мен май қышқылының профилін сипаттайтын боламыз.
Біз сыналған CH табиғаты (1) дернәсілдердің өсуіне, (2) липидтердің жалпы деңгейіне әсер етеді және (3) FA профилін модуляциялайды деп болжадық. Моносахаридтер тікелей сіңірілуі мүмкін, ал дисахаридтер гидролизденуі керек. Осылайша, моносахаридтер FA синтаза және тиоэстераза жолдары арқылы липогенез үшін тікелей энергия көздері немесе прекурсорлар ретінде көбірек қол жетімді, осылайша H. illucens личинкасының өсуін арттырады және резервтік липидтердің (әсіресе лаурик қышқылы) жинақталуына ықпал етеді.
Тексерілген CH өсу кезінде личинкалардың орташа дене салмағына әсер етті (1-сурет). FRU, GLU, SUC және MAL личинкалардың дене салмағын бақылау диетасына (CEL) ұқсас түрде арттырды. Керісінше, LAC және GAL дернәсілдердің дамуын тежейді. Атап айтқанда, LAC бүкіл өсу кезеңінде SUC-мен салыстырғанда дернәсілдердің өсуіне айтарлықтай теріс әсер етті: 3-ші күні 9,16 ± 1,10 мг 15,00 ± 1,01 мг (F6,21 = 12,77, p < 0,001; 1-сурет), 125,16 ± 42. мг және 211,79 ± 14,93 мг, тиісінше, 17-ші күні (F6,21 = 38,57, p <0,001; 1-сурет).
Басқару элементтері ретінде әртүрлі моносахаридтерді (фруктоза (FRU), галактоза (GAL), глюкоза (GLU)), дисахаридтерді (лактоза (LAC), мальтоза (MAL), сахароза (SUC)) және целлюлозаны (CEL) пайдалану. Қара солдат шыбынының дернәсілдерімен қоректенетін дернәсілдердің өсуі. Қисықтағы әрбір нүкте 100 дернәсіл популяциясынан (n = 4) кездейсоқ таңдалған 20 дернәсілді өлшеу арқылы есептелген орташа жеке салмақты (мг) білдіреді. Қате жолақтары SD білдіреді.
CEL диетасы 95,5 ± 3,8% дернәсілдердің тамаша өмір сүруін қамтамасыз етті. Сонымен қатар, еритін CH бар H. illucens қоректендіретін диеталардың өмір сүруі төмендеді (GLM: χ = 107,13, df = 21, p < 0,001), бұл зерттелген CH-да MAL және SUC (дисахаридтер) әсерінен болды. Өлім GLU, FRU, GAL (моносахарид) және LAC (EMM: p <0,001, 2-сурет) көрсеткіштерінен төмен болды.
Бақылау құралы ретінде әртүрлі моносахаридтермен (фруктоза, галактоза, глюкоза), дисахаридтермен (лактоза, мальтоза, сахароза) және целлюлозамен өңделген қара сарбаз шыбындарының дернәсілдерінің өмір сүруінің қортындысы. Бір әріппен емдеу бір-бірінен айтарлықтай ерекшеленбейді (EMM, p > 0,05).
Тексерілген барлық диеталар дернәсілдердің қуыру алдындағы кезеңге жетуіне мүмкіндік берді. Дегенмен, сыналған CHs дернәсіл дамуын ұзартуға бейім болды (F6,21=9,60, p<0,001; 1-кесте). Атап айтқанда, GAL және LAC-мен қоректенетін дернәсілдер CEL-де өсірілетін дернәсілдермен салыстырғанда қуыршақ алдындағы кезеңге жету үшін ұзағырақ болды (CEL-GAL: p<0,001; CEL-LAC: p<0,001; 1-кесте).
Сыналған CH личинка дене салмағына да әртүрлі әсер етті, CEL диетасымен қоректенетін дернәсілдердің дене салмағы 180,19 ± 11,35 мг-ға жетті (F6,21 = 16,86, p <0,001; 3-сурет). FRU, GLU, MAL және SUC орташа соңғы дернәсілдің дене салмағының 200 мг-нан асуына әкелді, бұл CEL-ден айтарлықтай жоғары болды (p <0,05). Керісінше, GAL және LAC-мен қоректенетін личинкалардың дене салмағы төмен болды, сәйкесінше 177,64 ± 4,23 мг және 156,30 ± 2,59 мг болды (p <0,05). Бұл әсер LAC кезінде айқынырақ болды, мұнда соңғы дене салмағы бақылау диетасына қарағанда төмен болды (CEL-LAC: айырмашылық = 23,89 мг; p = 0,03; 3-сурет).
Жеке дернәсілдердің орташа соңғы салмағы личинка дақтары (мг) және қара солдат шыбындары гистограмма (g) түрінде әр түрлі моносахаридтермен (фруктоза, галактоза, глюкоза), дисахаридтермен (лактоза, мальтоза, сахароза) және целлюлозамен (бақылау ретінде) көрсетілген. Бағаналы әріптер личинкалардың жалпы салмағы бойынша айтарлықтай ерекшеленетін топтарды білдіреді (p <0,001). Дернәсілдік дақтармен байланысты әріптер дернәсілдердің жеке салмағы айтарлықтай әр түрлі (p <0,001) топтарын білдіреді. Қате жолақтары SD білдіреді.
Максималды жеке салмақ личинка колониясының максималды соңғы жалпы салмағынан тәуелсіз болды. Шын мәнінде, FRU, GLU, MAL және SUC бар диеталар CEL-мен салыстырғанда резервуарда өндірілген личинкалардың жалпы салмағын арттырмайды (3-сурет). Дегенмен, LAC жалпы салмақты айтарлықтай төмендетті (CEL-LAC: айырмашылық = 9,14 г; p <0,001; 3-сурет).
1-кестеде өнімділік (личинка/тәулік) көрсетілген. Бір қызығы, CEL, MAL және SUC оңтайлы кірістері ұқсас болды (1-кесте). Керісінше, FRU, GAL, GLU және LAC CEL-мен салыстырғанда шығымдылықты төмендетті (1-кесте). GAL және LAC ең нашар орындады: өнімділік екі есе азайып, сәйкесінше 0,51 ± 0,09 г дернәсіл/тәулігіне және 0,48 ± 0,06 г дернәсілге жетті (1-кесте).
Моносахаридтер мен дисахаридтер CF личинкаларының липидтік құрамын арттырды (1-кесте). CLE диетасында 23,19 ± 0,70% липидті құрамында ДМ мазмұны бар дернәсілдер алынды. Салыстыру үшін, еритін қантпен қоректенетін дернәсілдердің орташа липидті мөлшері 30%-дан астам болды (1-кесте). Дегенмен, сыналған CHs олардың майлылығын бірдей дәрежеде арттырды.
Күтілгендей, CG субъектілері дернәсілдердің FA профиліне әртүрлі дәрежеде әсер етті (Cурет 4). SFA мазмұны барлық диеталарда жоғары болды және 60% -дан астамға жетті. MAL және SUC FA профилін теңестірді, бұл SFA мазмұнының артуына әкелді. MAL жағдайында, бір жағынан, бұл теңгерімсіздік негізінен моноқанықпаған май қышқылдары (MUFA) мазмұнының төмендеуіне әкелді (F6,21 = 7,47; p <0,001; 4-сурет). Екінші жағынан, SUC үшін төмендеу MUFA және PUFA арасында біркелкі болды. LAC және MAL FA спектріне қарама-қарсы әсер етті (SFA: F6,21 = 8,74; p < 0,001; MUFA: F6,21 = 7,47; p < 0,001; PUFA: χ2 = 19,60; Df = 6; p < 0,001 сурет; 4). LAC-пен қоректенетін дернәсілдердегі SFA-ның төменгі үлесі MUFA мазмұнын арттырады. Атап айтқанда, MUFA деңгейлері GAL (F6,21 = 7,47; p <0,001; 4-сурет) қоспағанда, басқа еритін қанттармен салыстырғанда LAC-пен қоректенетін личинкаларда жоғары болды.
Басқару элементтері ретінде әртүрлі моносахаридтерді (фруктоза (FRU), галактоза (GAL), глюкоза (GLU)), дисахаридтерді (лактоза (LAC), мальтоза (MAL), сахароза (SUC)) және целлюлозаны (CEL) пайдалану, май қышқылының қорап сызбасы қара солдат шыбынының дернәсілдерімен қоректенетін композиция. Нәтижелер жалпы FAME пайызы ретінде көрсетіледі. Әртүрлі әріптермен белгіленген емдеу айтарлықтай ерекшеленеді (p <0,001). а) қаныққан май қышқылдарының үлесі; б) бір қанықпаған май қышқылдары; (c) Полиқанықпаған май қышқылдары.
Анықталған май қышқылдарының ішінде лаурин қышқылы (С12:0) барлық байқалған спектрлерде басым болды (40%-дан астам). Басқа қазіргі ҚҚҚ пальмитин қышқылы (C16:0) (10%-дан аз), стеарин қышқылы (C18:0) (2,5%-дан аз) және каприн қышқылы (C10:0) (1,5%-дан аз) болды. MUFA негізінен олеин қышқылымен (C18:1n9) (9,5%-дан аз) ұсынылған, ал PUFA-лар негізінен линол қышқылынан (C18:2n6) (13,0%-дан аз) тұрады (Қосымша S1 кестені қараңыз). Сонымен қатар, қосылыстардың шағын үлесін анықтау мүмкін болмады, әсіресе CEL личинкаларының спектрлерінде анықталмаған қосылыс нөмірі 9 (UND9) орташа есеппен 2,46 ± 0,52% құрады (Қосымша S1 кестені қараңыз). GC×GC-FID талдауы оның бес немесе алты қос байланысы бар 20 көміртекті май қышқылы болуы мүмкін екенін көрсетті (Қосымша S5 суретін қараңыз).
PERMANOVA талдауы май қышқылдарының профиліне негізделген үш түрлі топты анықтады (F6,21 = 7,79, p <0,001; 5-сурет). TBC спектрінің негізгі компоненттік талдауы (PCA) мұны көрсетеді және екі компонентпен түсіндіріледі (5-сурет). Негізгі компоненттер дисперсияның 57,9% түсіндірді және маңыздылығы бойынша лаурин қышқылы (C12:0), олеин қышқылы (C18:1n9), пальмитин қышқылы (C16:0), стеарин қышқылы (C18:0) және линолен қышқылы (C18:3n3) (S4 суретті қараңыз). Екінші компонент дисперсияның 26,3% түсіндірді және маңыздылығы бойынша декан қышқылын (C10:0) және линол қышқылын (C18:2n6 cis) қамтиды (Қосымша S4 суретін қараңыз). Қарапайым қанттары (FRU, GAL және GLU) бар диеталардың профильдері ұқсас сипаттарды көрсетті. Керісінше, дисахаридтер әртүрлі профильдерді берді: бір жағынан MAL және SUC және екінші жағынан LAC. Атап айтқанда, MAL CEL-мен салыстырғанда FA профилін өзгерткен жалғыз қант болды. Сонымен қатар, MAL профилі FRU және GLU профильдерінен айтарлықтай ерекшеленді. Атап айтқанда, MAL профилі C12:0 (54,59 ± 2,17%) ең жоғары үлесті көрсетті, бұл оны CEL (43,10 ± 5,01%), LAC (43,35 ± 1,31%), FRU (48,90 ± 1,97%) және GLU (48,38 ± 2,17%) профильдері (қараңыз Қосымша кесте S1). MAL спектрі сонымен қатар ең төменгі C18:1n9 мазмұнын көрсетті (9,52 ± 0,50%), бұл оны LAC (12,86 ± 0,52%) және CEL (12,40 ± 1,31%) спектрлерінен одан әрі ерекшелендірді. Осыған ұқсас үрдіс C16:0 үшін де байқалды. Екінші компонентте LAC спектрі ең жоғары C18:2n6 мазмұнын көрсетті (17,22 ± 0,46%), ал MAL ең төменгі (12,58 ± 0,67%) көрсетті. C18:2n6 сонымен қатар LAC-ті төменгі деңгейлерді (13,41 ± 2,48%) көрсеткен бақылаудан (CEL) ажыратты (Қосымша S1 кестесін қараңыз).
Бақылау ретінде әртүрлі моносахаридтермен (фруктоза, галактоза, глюкоза), дисахаридтермен (лактоза, мальтоза, сахароза) және целлюлозамен қара сарбаз шыбындарының дернәсілдерінің май қышқылды профилінің РҚА сызбасы.
H. illucens личинкаларына еритін қанттардың қоректік әсерін зерттеу үшін тауық жеміндегі целлюлоза (CEL) глюкоза (GLU), фруктоза (FRU), галактоза (GAL), мальтоза (MAL), сахароза (SUC) және лактоза (LAC). Алайда моносахаридтер мен дисахаридтер ЖЖ дернәсілдерінің дамуына, тіршілігіне және құрамына әртүрлі әсер етті. Мысалы, GLU, FRU және олардың дисахаридтік формалары (MAL және SUC) дернәсілдердің өсуіне оң демеуші әсер етіп, оларға CEL-ге қарағанда жоғары соңғы дене салмағына қол жеткізуге мүмкіндік берді. Сіңірілмейтін CEL-ден айырмашылығы, GLU, FRU және SUC ішек тосқауылдарын айналып өтіп, тұжырымдалған диеталарда маңызды қоректік заттардың көзі ретінде қызмет ете алады16,28. MAL-да жануарлардың арнайы тасымалдаушылары жоқ және ассимиляцияға дейін глюкозаның екі молекуласына дейін гидролизденеді деп есептеледі15. Бұл молекулалар жәндіктер денесінде тікелей энергия көзі немесе липидтер түрінде сақталады18. Біріншіден, соңғысына келетін болсақ, кейбір байқалған интрамодальдық айырмашылықтар жыныстық қатынастағы шағын айырмашылықтарға байланысты болуы мүмкін. Шынында да, H. illucens-те көбею толығымен өздігінен болуы мүмкін: ересек аналықтардың жұмыртқа салу қоры табиғи түрде жеткілікті және еркектерге қарағанда салмағы ауыр29. Дегенмен, BSFL-де липидтердің жинақталуы GLU және ксилоза үшін бұрын байқалғандай, диетада еритін CH2 қабылдауымен корреляцияланады26,30. Мысалы, Ли және т.б.30 дернәсілдік диетаға 8% GLU қосқанда, BSF личинкаларының липидті құрамы бақылаумен салыстырғанда 7,78%-ға артқанын байқады. Біздің нәтижелеріміз осы бақылауларға сәйкес келеді, бұл еритін қантпен қоректенетін дернәсілдердегі май мөлшері GLU қоспасымен 8,57%-ға жоғарылаумен салыстырғанда, CEL диетасымен қоректенетін дернәсілдерге қарағанда жоғары екенін көрсетеді. Бір таңқаларлығы, дернәсілдердің өсуіне, соңғы дене салмағына және тірі қалуына жағымсыз әсерлерге қарамастан, GAL және LAC-мен қоректенетін дернәсілдерде ұқсас нәтижелер байқалды. LAC-пен қоректенетін дернәсілдер CEL диетасымен қоректенетіндерге қарағанда айтарлықтай аз болды, бірақ олардың май мөлшері басқа еритін қанттармен қоректенетін дернәсілдермен салыстыруға болатын. Бұл нәтижелер BSFL-ге лактозаның антинутриттік әсерін көрсетеді. Біріншіден, диетада CH көп мөлшерде болады. Моносахаридтер мен дисахаридтердің абсорбция және гидролиз жүйелері, сәйкесінше, қанығуға жетуі мүмкін, бұл ассимиляция процесінде кедергілерді тудырады. Гидролизге келетін болсақ, оны α- және β-глюкозидазалар 31 жүзеге асырады. Бұл ферменттер олардың мөлшеріне және олардың құрамдас моносахаридтері арасындағы химиялық байланыстарға (α немесе β байланыстар) байланысты артықшылықты субстраттарға ие 15 . LAC-тың GLU және GAL-ға гидролизі BSF 32 ішекте белсенділігі көрсетілген β-галактозидаза ферментімен жүзеге асырылады. Дегенмен, оның экспрессиясы личинкалар тұтынатын LAC мөлшерімен салыстырғанда жеткіліксіз болуы мүмкін. Керісінше, жәндіктерде мол экспрессияланатын α-глюкозидаза мальтаза және сахароза 15 көп мөлшерде MAL және сахароза SUC ыдыратуға қабілетті, осылайша бұл қанықтыру әсерін шектейді. Екіншіден, антинутрициялық әсерлер басқа емдеу әдістерімен салыстырғанда жәндіктер ішек амилазасының белсенділігінің төмендеуіне және қоректену тәртібінің баяулауына байланысты болуы мүмкін. Шынында да, еритін қанттар амилаза сияқты жәндіктердің ас қорытуы үшін маңызды фермент белсенділігінің стимуляторлары және қоректену реакциясының триггерлері ретінде анықталды33,34,35. Қоздыру дәрежесі қанттың молекулалық құрылымына байланысты өзгереді. Іс жүзінде дисахаридтер сіңірілу алдында гидролизді қажет етеді және олардың құрамдас моносахаридтеріне қарағанда амилазаны көбірек ынталандыруға бейім. Керісінше, LAC жұмсақ әсерге ие және әртүрлі түрлерде жәндіктердің өсуін қолдауға қабілетсіз екендігі анықталды33,35. Мысалы, Spodoptera exigua (Boddie 1850) зиянкесінде шынжыр табанды ортаңғы ішек ферменттерінің сығындыларында LAC гидролитикалық белсенділігі анықталмады36.
FA спектріне қатысты біздің нәтижелеріміз сыналған CH-ның маңызды модуляциялық әсерлерін көрсетеді. Айта кету керек, лаурин қышқылы (C12: 0) диетадағы жалпы FA-ның 1% -дан азын құраса да, ол барлық профильдерде басым болды (Қосымша S1 кестені қараңыз). Бұл лаурин қышқылы ацетил-КоА карбоксилаза және FA синтазасы қатысатын жол арқылы H. illucens құрамындағы диеталық CH-дан синтезделетіні туралы алдыңғы деректерге сәйкес келеді19,27,37. Біздің нәтижелеріміз CEL негізінен сіңірілмейтінін және бірнеше BSFL зерттеулерінде талқыланғандай, BSF бақылау диеталарында «көлемді агент» ретінде әрекет ететінін растайды38,39,40. CEL-ді LAC-дан басқа моносахаридтермен және дисахаридтермен ауыстыру C12:0 қатынасын арттырды, бұл личинкалардың CH-ті қабылдауының жоғарылағанын көрсетеді. Бір қызығы, MAL және SUC дисахаридтері олардың құрамдас моносахаридтеріне қарағанда лаурин қышқылының синтезін тиімдірек көтереді, бұл GLU және FRU полимерленуінің жоғары дәрежесіне қарамастан және Drosophila жануарлардың ақуыз түрлерінде анықталған жалғыз сахароза тасымалдаушысы болғандықтан дисахаридтерді тасымалдаушылар H. illucens личинкаларының ішегінде болмауы мүмкін15, the GLU және FRU пайдалану артады. Дегенмен, GLU және FRU BSF арқылы теориялық тұрғыдан оңай метаболизденетініне қарамастан, олар субстраттар мен ішек микроорганизмдері арқылы оңайырақ метаболизденеді, бұл дисахаридтермен салыстырғанда олардың тезірек ыдырауына және личинкалардың пайдалануының төмендеуіне әкелуі мүмкін.
Бір қарағанда, LAC және MAL-мен қоректенетін дернәсілдердің липидтік құрамы салыстырмалы болды, бұл осы қанттардың ұқсас биожетімділігін көрсетеді. Дегенмен, таңқаларлық, LAC FA профилі SFA-ға бай болды, әсіресе MAL-мен салыстырғанда C12:0 мазмұны төмен. Бұл айырмашылықты түсіндіретін бір гипотеза LAC ацетил-КоА FA синтаза арқылы диеталық FA биожинақталуын ынталандыруы мүмкін. Бұл гипотезаны растай отырып, LAC личинкаларында CEL диетасына (1,27 ± 0,16%) қарағанда деканат (C10:0) қатынасы (0,77 ± 0,13%) ең төмен болды, бұл FA синтаза мен тиоэстераза белсенділігінің төмендеуін көрсетеді19. Екіншіден, тағамдық май қышқылдары H. illucens27 SFA құрамына әсер ететін негізгі фактор болып саналады. Біздің тәжірибелерімізде линол қышқылы (C18:2n6) диеталық май қышқылдарының 54,81% құрады, LAC дернәсілдеріндегі үлес 17,22 ± 0,46% және MAL 12,58 ± 0,67% болды. Олеин қышқылы (cis + trans C18:1n9) (диетада 23,22%) ұқсас үрдісті көрсетті. α-линолен қышқылының (C18:3n3) қатынасы да биоаккумуляциялық гипотезаны қолдайды. Бұл май қышқылы субстратты байытқанда, мысалы, личинкалардағы жалпы май қышқылдарының 6-9% -на дейін зығыр тортын қосқанда BSFL-де жиналатыны белгілі. Байытылған диеталарда C18:3n3 жалпы диеталық май қышқылдарының 35% дейін құра алады. Дегенмен, біздің зерттеуімізде C18:3n3 май қышқылы профилінің тек 2,51% құрады. Табиғатта табылған үлес біздің дернәсілдерімізде төмен болғанымен, бұл пропорция MAL-ге (0,49 ± 0,04%) қарағанда LAC личинкаларында (0,87 ± 0,02%) жоғары болды (p <0,001; Қосымша S1 кестені қараңыз). CEL диетасының аралық үлесі 0,72 ± 0,18% болды. Соңында, CF личинкаларындағы пальмитин қышқылының (C16: 0) қатынасы синтетикалық жолдар мен диеталық FA19 үлесін көрсетеді. Hoc және т.б. 19 диетаны зығыр дәнімен байытқанда C16:0 синтезінің төмендегенін байқады, бұл CH қатынасының төмендеуіне байланысты ацетил-КоА субстратының қолжетімділігінің төмендеуіне байланысты болды. Бір таңқаларлығы, екі диетаның да CH мазмұны ұқсас және MAL жоғары биожетімділігін көрсеткенімен, MAL дернәсілдері ең төмен C16:0 қатынасын көрсетті (10,46 ± 0,77%), ал LAC 12,85 ± 0,27% (p <0,05; қараңыз) жоғарырақ үлесті көрсетті. Қосымша кесте S1). Бұл нәтижелер қоректік заттардың BSFL ас қорытуына және метаболизміне кешенді әсерін көрсетеді. Қазіргі уақытта бұл тақырып бойынша зерттеулер Диптераға қарағанда Лепидоптерада мұқият жүргізілуде. Шынжыр табандарда LAC SUC және FRU34,35 сияқты басқа еритін қанттармен салыстырғанда азықтандыру әрекетінің әлсіз стимуляторы ретінде анықталды. Атап айтқанда, Spodopteralittoralis-те (Boisduval 1833) MAL тұтыну LAC34-ке қарағанда ішекте амилолитикалық белсенділікті жоғарылатты. BSFL-дегі ұқсас әсерлер MAL личинкаларында C12:0 синтетикалық жолының күшейтілген ынталандырылуын түсіндіруі мүмкін, бұл ішекте сіңірілетін CH жоғарылауымен, ұзақ тамақтанумен және ішек амилаза әрекетімен байланысты. LAC болған кезде азықтандыру ырғағының аз ынталандырылуы LAC личинкаларының баяу өсуін түсіндіруі мүмкін. Сонымен қатар, Liu Yanxia және т.б. 27 H. illucens субстраттары липидтердің сақтау мерзімі CH қарағанда ұзағырақ екенін атап өтті. Сондықтан LAC личинкалары дамуын аяқтау үшін диеталық липидтерге көбірек сенуі мүмкін, бұл олардың соңғы липидтік құрамын арттыруы және май қышқылының профилін модуляциялауы мүмкін.
Біздің білуімізше, тек бірнеше зерттеулер BSF диеталарына моносахаридтер мен дисахаридтерді қосудың олардың FA профильдеріне әсерін тексерді. Біріншіден, Ли және т.б. 30 GLU және ксилоза әсерін бағалады және 8% қосу жылдамдығымен бізге ұқсас липидтердің деңгейін байқады. FA профилі егжей-тегжейлі емес және негізінен SFA-дан тұрды, бірақ екі қант арасында немесе олар бір уақытта ұсынылған кезде ешқандай айырмашылықтар табылмады30. Сонымен қатар, Кон және т.б. 41 сәйкес FA профильдеріне тауық азығына 20% GLU, SUC, FRU және GAL қосудың әсері жоқ екенін көрсетті. Бұл спектрлер биологиялық емес, техникалық көшірмелерден алынды, бұл авторлар түсіндіргендей, статистикалық талдауды шектей алады. Сонымен қатар, изо-қантты бақылаудың болмауы (CEL көмегімен) нәтижелерді түсіндіруді шектейді. Жақында Nugroho RA және басқалардың екі зерттеуі. FA спектрлерінде ауытқуларды көрсетті42,43. Бірінші зерттеуде Nugroho RA et al. 43 ферменттелген пальма өзегі ұнына FRU қосу әсерін тексерді. Алынған дернәсілдердің FA профилі PUFA-ның әдеттен тыс жоғары деңгейін көрсетті, оның 90% -дан астамы 10% FRU бар диетадан алынған (біздің зерттеуге ұқсас). Бұл диетада PUFA-ға бай балық түйіршіктері болса да, 100% ашытылған PCM-ден тұратын бақылау диетасындағы дернәсілдердің FA профилінің мәндері бұрын хабарланған профильге сәйкес келмеді, атап айтқанда C18:3n3 нормадан тыс деңгейі 17,77 Конъюгацияланған линол қышқылы үшін ± 1,67% және 26,08 ± 0,20% (C18:2n6t), линол қышқылының сирек изомері. Екінші зерттеу пальма ядросының ашытылған ұнындағы FRU, GLU, MAL және SUC42 сияқты ұқсас нәтижелерді көрсетті. Бұл зерттеулер, біз сияқты, BSF дернәсілінің диеталық сынақтарының нәтижелерін салыстырудағы елеулі қиындықтарды көрсетеді, мысалы, бақылау таңдауы, басқа қоректік көздермен өзара әрекеттесу және FA талдау әдістері.
Тәжірибе барысында біз субстраттың түсі мен иісі қолданылатын диетаға байланысты өзгеретінін байқадық. Бұл дернәсілдердің субстратында және ас қорыту жүйесінде байқалатын нәтижелерде микроорганизмдер рөл атқаруы мүмкін екенін көрсетеді. Шын мәнінде, моносахаридтер мен дисахаридтер колонизатор микроорганизмдер арқылы оңай метаболизденеді. Микроорганизмдердің еритін қанттарды жылдам тұтынуы этанол, сүт қышқылы, қысқа тізбекті май қышқылдары (мысалы, сірке қышқылы, пропион қышқылы, май қышқылы) және көмірқышқыл газы сияқты микробтық метаболизм өнімдерінің көп мөлшерін шығаруға әкелуі мүмкін44. Осы қосылыстардың кейбіреулері ұқсас даму жағдайында Кон және т.б.41 бақылаған дернәсілдерге өлімге әкелетін уытты әсерлерге жауапты болуы мүмкін. Мысалы, этанол жәндіктерге зиянды45. Көмірқышқыл газының көп мөлшері оның резервуар түбінде жиналуына әкелуі мүмкін, егер ауа айналымы оның шығуына мүмкіндік бермесе, атмосфераны оттегінен айыруы мүмкін. SCFA-ға қатысты олардың жәндіктерге, әсіресе H. illucens-ке әсері әлі де аз зерттелген, дегенмен сүт қышқылы, пропион қышқылы және май қышқылы Callosobruchus maculatus (Fabricius 1775)46 өлімге әкелетіні көрсетілген. Drosophila melanogaster Meigen 1830-да бұл SCFA-лар аналықтарды жұмыртқа шығару орындарына бағыттайтын иіс сезу маркерлері болып табылады, бұл дернәсілдердің дамуындағы пайдалы рөлді көрсетеді47. Дегенмен, сірке қышқылы қауіпті зат ретінде жіктеледі және дернәсілдердің дамуын айтарлықтай тежей алады47. Керісінше, микробтық жолмен алынған лактат жақында Дрозофиладағы инвазивті ішек микробтарына қарсы қорғаныш әсері бар екені анықталды48. Сонымен қатар, ас қорыту жүйесіндегі микроорганизмдер жәндіктердегі CH ас қорытуында да рөл атқарады49. Омыртқалы жануарларда 50-де қоректену жылдамдығы және геннің экспрессиясы сияқты SCFA-ның ішек микробиотасына физиологиялық әсері сипатталған. Олар сондай-ақ H. illucens личинкаларына трофикалық әсер етуі мүмкін және ішінара FA профильдерін реттеуге ықпал етуі мүмкін. Осы микробтық ашыту өнімдерінің қоректік әсерлерін зерттеу олардың H. illucens тамақтануына әсерін нақтылайды және олардың дамуы мен FA-ға бай субстраттардың құндылығы тұрғысынан пайдалы немесе зиянды микроорганизмдер бойынша болашақ зерттеулерге негіз болады. Осыған байланысты жаппай өсірілетін жәндіктердің ас қорыту процестеріндегі микроорганизмдердің рөлі көбірек зерттелуде. Жәндіктер жәндіктер қорытуы қиын қоректік заттардың ыдырауына немесе детоксикациясына маманданған микроорганизмдердің дамуын жеңілдететін рН және оттегімен қамтамасыз ету жағдайларын қамтамасыз ететін биореакторлар ретінде қарастырыла бастады 51 . Жақында Xiang және т.б.52, мысалы, органикалық қалдықтарды бактериялық қоспамен егу CF-ге лигноцеллюлозаның ыдырауына мамандандырылған бактерияларды тартуға мүмкіндік беретінін көрсетті, бұл оның субстраттағы деградациясын личинкасы жоқ субстраттармен салыстырғанда жақсартады.
Ақырында, H. illucens органикалық қалдықтарды тиімді пайдалануына қатысты, CEL және SUC диеталары күніне личинкалардың ең көп санын шығарды. Бұл жеке даралардың төменгі соңғы салмағына қарамастан, қорытылмайтын CH-дан тұратын субстратта өндірілген личинкалардың жалпы салмағы моносахаридтер мен дисахаридтер бар гомосахаридті диетада алынғанмен салыстырылатынын білдіреді. Біздің зерттеуімізде басқа қоректік заттардың деңгейі личинка популяциясының өсуін қамтамасыз ету үшін жеткілікті екенін және CEL қосу шектелуі керек екенін атап өту маңызды. Дегенмен, личинкалардың соңғы құрамы әртүрлі, бұл жәндіктерді бағалаудың дұрыс стратегиясын таңдаудың маңыздылығын көрсетеді. Тұтас жеммен қоректенетін CEL дернәсілдері майдың аздығына және лаурин қышқылының төмен деңгейіне байланысты мал азығы ретінде пайдалануға қолайлырақ, ал SUC немесе MAL диеталарымен қоректенетін дернәсілдер майдың, әсіресе биоотындағы құндылығын арттыру үшін басу арқылы майсыздандыруды қажет етеді. сектор. LAC ірімшік өндірісінен алынған сарысу сияқты сүт өнеркәсібінің жанама өнімдерінде кездеседі. Жақында оны қолдану (3,5% лактоза) личинкалардың соңғы салмағын жақсартты53. Дегенмен, осы зерттеудегі бақылау диетасында липидтердің жартысы болды. Сондықтан LAC антинутрициялық әсерлері диеталық липидтердің дернәсілдік биоаккумуляциясы арқылы қарсы тұруы мүмкін.
Алдыңғы зерттеулер көрсеткендей, моносахаридтер мен дисахаридтердің қасиеттері BSFL өсуіне айтарлықтай әсер етеді және оның FA профилін модуляциялайды. Атап айтқанда, LAC диеталық липидтерді сіңіру үшін CH қолжетімділігін шектеу арқылы дернәсілдің дамуы кезінде антинутрициялық рөл атқарады, осылайша UFA биоаккумуляциясына ықпал етеді. Осы контекстте PUFA және LAC біріктіретін диеталарды пайдаланып биоталдау жүргізу қызықты болар еді. Сонымен қатар, микроорганизмдердің рөлі, әсіресе қантты ашыту процестерінен алынған микробтық метаболиттердің (мысалы, SCFAs) рөлі зерттеуге лайық зерттеу тақырыбы болып қала береді.
Жәндіктер 2017 жылы Agro-Bio Tech, Gembloux, Бельгияда құрылған Функционалдық және эволюциялық энтомология зертханасының BSF колониясынан алынды (өсіру әдістері туралы қосымша мәліметтерді Hoc және т.б. 19 қараңыз). Эксперименттік сынақтар үшін 2,0 г BSF жұмыртқасы күн сайын асыл тұқымды торлардан кездейсоқ түрде жиналды және 2,0 кг 70% ылғалды тауық жемінде инкубацияланды (Авве, Левен, Бельгия). Инкубациядан кейін бес күннен кейін дернәсілдер субстраттан бөлініп, тәжірибелік мақсатта қолмен есептелді. Әрбір партияның бастапқы салмағы өлшенді. Орташа жеке салмақ 7,125 ± 0,41 мг болды және әрбір емдеу үшін орташа мән S2 қосымша кестесінде көрсетілген.
Диеталық формула Барраган-Фонсека және т.б. зерттеуінен бейімделген. 38 . Қысқаша айтқанда, дернәсілдік тауықтар үшін бірдей жем сапасы, ұқсас құрғақ зат (ҚМ), жоғары CH (жаңа диетаға негізделген 10%) және консистенция арасында ымыраға келу анықталды, өйткені қарапайым қанттар мен дисахаридтердің құрылымдық қасиеттері жоқ. Өндірушінің ақпаратына сәйкес (Chicken Feed, AVEVE, Leuven, Бельгия), сыналған CH (яғни еритін қант) 16,0% ақуыздан, 5,0% жалпы липидтерден тұратын диетаға автоклавталған су ерітіндісі (15,9%) ретінде бөлек қосылды. Күлден және 4,8% талшықтан тұратын 11,9% ұнтақталған тауық жемі. Әрбір 750 мл банкада (17,20 × 11,50 × 6,00 см, AVA, Tempsee, Бельгия) 101,9 г автоклавталған CH ерітіндісі 37,8 г тауық жемімен араластырылды. Әрбір диета үшін құрғақ зат мөлшері 37,0% құрады, оның ішінде біртекті ақуыз (11,7%), біртекті липидтер (3,7%) және біртекті қанттар (қосылған CH 26,9%). CH сыналған глюкоза (GLU), фруктоза (FRU), галактоза (GAL), мальтоза (MAL), сахароза (SUC) және лактоза (LAC). Бақылау диетасы H. illucens личинкалары үшін сіңірілмейтін болып саналатын целлюлозадан (CEL) тұрды 38 . 5 күндік жүз дернәсілді ортасында диаметрі 1 см тесігі бар қақпақпен жабдықталған және пластикалық москит торымен жабылған науаға салды. Әрбір диета төрт рет қайталанады.
Дернәсілдердің салмағы эксперимент басталғаннан кейін үш күннен кейін өлшенді. Әрбір өлшеу үшін стерильді жылы су мен қысқышты пайдаланып субстраттан 20 личинка алынып, кептірілген және өлшенген (STX223, Ohaus Scout, Parsippany, АҚШ). Өлшеуден кейін личинкалар субстраттың ортасына қайтарылды. Өлшеулер аптасына үш рет жүйелі түрде бірінші препупа пайда болғанға дейін жүргізілді. Осы кезде барлық дернәсілдерді жоғарыда сипатталғандай жинаңыз, санаңыз және өлшеңіз. 6-кезең дернәсілдерін (яғни, ақ дернәсілдер препупальді кезең алдындағы дернәсілдік кезеңге сәйкес) және препупаларды (яғни, BSF личинкалары қара болып, қоректенуін тоқтатып, метаморфозға қолайлы орта іздейтін соңғы дернәсіл кезеңі) бөлектеп, - Композициялық талдау үшін 18°C. Өнімділік бір табаққа (г) алынған жәндіктердің жалпы массасының (6-кезеңнің дернәсілдері мен препупалары) даму уақытына (d) қатынасы ретінде есептелді. Мәтіндегі барлық орташа мәндер келесідей көрсетіледі: орташа ± SD.
Еріткіштерді (гексан (Hex), хлороформ (CHCl3), метанол (MeOH)) қолданатын барлық келесі қадамдар түтін сорғыш астында орындалды және нитрил қолғаптарын, алжапқыштарды және қауіпсіздік көзілдірігін киюді талап етті.
Ақ дернәсілдер FreeZone6 мұздатқыш кептіргіште (Labconco Corp., Канзас-Сити, МО, АҚШ) 72 сағат кептірілген, содан кейін ұнтақталған (IKA A10, Staufen, Германия). Жалпы липидтер ±1 г ұнтақтан Folch әдісі 54 арқылы алынды. Әрбір лиофилденген үлгінің қалдық ылғалдылығы жалпы липидтерді түзету үшін ылғал анализаторын (MA 150, Sartorius, Göttiggen, Германия) пайдаланып екі данада анықталды.
Май қышқылының метил эфирлерін алу үшін жалпы липидтер қышқылдық жағдайда трансэтерификацияланды. Қысқаша айтқанда, шамамен 10 мг липидтер/100 мкл CHCl3 ерітіндісі (100 мкл) 8 мл Pyrex© түтігінде (SciLabware – DWK Life Sciences, Лондон, Ұлыбритания) азотпен буланған. Түтік Hex (0,5 мл) (органикалық іздерді талдау үшін PESTINORM®SUPRATRACE n-Hexane > 95%, VWR Chemicals, Radnor, PA, АҚШ) және Hex/MeOH/BF3 (20/25/55) ерітіндісіне (0,5) орналастырылды. мл) су моншасында 70°С 90 мин. Салқындағаннан кейін 10% сулы H2SO4 ерітіндісі (0,2 мл) және қаныққан NaCl ерітіндісі (0,5 мл) қосылды. Түтікшені араластырыңыз және қоспаны таза Hex (8,0 мл) толтырыңыз. Жоғарғы фазаның бір бөлігі құтыға ауыстырылды және жалын ионизациясы детекторымен (GC-FID) газ хроматографиясымен талданды. Үлгілер бөлу режимінде бөлінетін/бөлінбейтін инжектормен (240 °C) жабдықталған Trace GC Ultra (Thermo Scientific, Waltham, MA, АҚШ) көмегімен (бөлінетін ағын: 10 мл/мин), Stabilwax®-DA бағаны () арқылы талданды. 30 м, 0,25 мм идентификатор, 0,25 мкм, Restek Corp., Bellefonte, PA, АҚШ) және FID (250 °C). Температура бағдарламасы келесідей орнатылды: 1 мин 50 °C, 30 °C/мин 150 °C дейін жоғарылайды, 4 °C/мин 240 °C дейін жоғарылайды және 240 °C 5 минут бойы жалғасуда. Hex дайындама ретінде пайдаланылды және сәйкестендіру үшін құрамында 37 май қышқылы метил эфирлері (Supelco 37-компонентті FAMEmix, Sigma-Aldrich, Overijse, Бельгия) бар анықтамалық стандарт пайдаланылды. Қанықпаған май қышқылдарының (UFAs) идентификациясы жан-жақты екі өлшемді GC (GC × GC-FID) арқылы расталды және изомерлердің болуы Ferrara және т.б. әдісін шамалы бейімдеу арқылы дәл анықталды. 55. Құрал туралы мәліметтерді S3 қосымша кестесінен және нәтижелерді S5 қосымша суретінен табуға болады.
Деректер Excel электрондық кестесі пішімінде берілген (Microsoft Corporation, Redmond, WA, АҚШ). Статистикалық талдау R Studio (2023.12.1+402 нұсқасы, Бостон, АҚШ) арқылы орындалды 56 . Дернәсілдердің салмағы, даму уақыты және өнімділігі туралы деректер сызықтық модельді (LM) («lm» пәрмені, R пакеті «stats» 56 ) арқылы бағаланды, өйткені олар Гаусс таралымына сәйкес келеді. Биномдық модельді талдау арқылы өмір сүру деңгейі жалпы сызықтық модельді (GLM) («glm» пәрмені, R пакеті «lme4» 57) арқылы бағаланды. Қалыптылық пен гомоскедастық Шапиро сынағы («shapiro.test» командасы, R пакеті «stats» 56 ) және деректер дисперсиясын талдау ( betadisper пәрмені, R пакеті «вегетариандық» 58 ) арқылы расталды. LM немесе GLM сынағының маңызды p-мәндерін (p <0,05) жұптық талдаудан кейін EMM тесті арқылы топтар арасындағы елеулі айырмашылықтар анықталды («emmeans» командасы, R пакеті «emmeans» 59).
Толық FA спектрлері евклидтік қашықтық матрицасын және 999 ауыстыруды пайдалана отырып, дисперсияның көп айнымалы ауыстырымдылық талдауы (яғни permMANOVA; «adonis2» командасы, R бумасы «вегетариандық» 58) арқылы салыстырылды. Бұл диеталық көмірсулардың табиғаты әсер ететін май қышқылдарын анықтауға көмектеседі. FA профильдеріндегі елеулі айырмашылықтар жұптық салыстырулар арқылы әрі қарай талданды. Содан кейін деректер негізгі құрамдас талдау (PCA) ("PCA" командасы, R бумасы "FactoMineR" 60) арқылы визуалды. Осы айырмашылықтарға жауапты FA корреляциялық шеңберлерді түсіндіру арқылы анықталды. Бұл үміткерлер дисперсияның бір жақты талдауы (ANOVA) («aov» пәрмені, R бумасы «stats» 56 ) арқылы расталды, содан кейін Tukey's post hoc тесті (TukeyHSD пәрмені, R пакеті «stats» 56 ). Талдау алдында қалыптылық Шапиро-Уилк сынағы арқылы бағаланды, гомоскедастық Бартлетт сынағы («bartlett.test» командасы, R пакеті «stats» 56) арқылы тексерілді және екі болжамның ешқайсысы орындалмаса, параметрлік емес әдіс пайдаланылды. . Талдаулар салыстырылды («kruskal.test» командасы, R пакеті «stats» 56 ), содан кейін Даннның пост hoc сынақтары қолданылды ( dunn.test пәрмені, R пакеті «dunn.test» 56 ).
Қолжазбаның соңғы нұсқасы ағылшын корректоры ретінде Grammarly Editor көмегімен тексерілді (Grammarly Inc., Сан-Франциско, Калифорния, АҚШ) 61 .
Ағымдағы зерттеу барысында жасалған және талданған деректер жинақтары негізделген сұрау бойынша тиісті автордан қол жетімді.
Ким, С.В., т.б. Азық ақуызына деген жаһандық сұранысты қанағаттандыру: қиындықтар, мүмкіндіктер және стратегиялар. Animal Biosciences Annals 7, 221–243 (2019).
Капаррос Мегидо, Р., т.б. Жеуге жарамды жәндіктердің әлемдік өндірісінің жағдайы мен болашағына шолу. Энтомол. Бас 44, (2024).
Рехман, К.ур және т.б. Қара сарбаз шыбыны (Hermetia illucens) органикалық қалдықтарды басқаруға арналған ықтимал инновациялық және экологиялық таза құрал ретінде: қысқаша шолу. Қалдықтарды басқару жөніндегі зерттеулер 41, 81–97 (2023).
Скала, А., т.б. Субстрат өсіру өнеркәсіпте өндірілген қара сарбаз шыбынының дернәсілдерінің өсуіне және макронутриенттік күйіне әсер етеді. Ғылым. 10 реп., 19448 (2020 ж.).
Шу, М.К., т.б. Нан үгіндісінде өсірілген қара солдат шыбынының дернәсілдерінен алынған май сығындыларының микробқа қарсы қасиеттері. Жануарларға арналған тағам туралы ғылым, 64, (2024).
Шмитт, Э. және де Врис, В. (2020). Азық-түлік өндірісі және қоршаған ортаға әсерді азайту үшін топырақты түзету ретінде қара сарбаз шыбынының көңін пайдаланудың ықтимал артықшылықтары. Ағымдағы пікір. Жасыл қолдау. 25, 100335 (2020 ж.).
Франко А. және т.б. Қара сарбаз шыбынының липидтері - инновациялық және тұрақты көз. Тұрақты даму, т. 13, (2021).
Ван Хуис, А. Жәндіктер азық-түлік және жем ретінде, ауыл шаруашылығында пайда болған өріс: шолу. J. Жәндіктерге арналған жем 6, 27–44 (2020).
Качор, М., Булак, П., Проц-Петриха, К., Кириченко-Бабко, М. және Бегановский, А. Қара солдат шыбынының өнеркәсіп пен ауыл шаруашылығында әртүрлі қолданылуы – шолу. Биология 12, (2023).
Hock, B., Noel, G., Carpentier, J., Francis, F., and Caparros Megido, R. Hermetia illucens жасанды көбеюін оңтайландыру. PLOS ONE 14, (2019).
Жіберу уақыты: 25 желтоқсан 2024 ж