ຂໍຂອບໃຈທ່ານສໍາລັບການຢ້ຽມຢາມ Nature.com. ເວີຊັນຂອງຕົວທ່ອງເວັບທີ່ທ່ານກໍາລັງໃຊ້ມີການສະຫນັບສະຫນູນ CSS ຈໍາກັດ. ເພື່ອໃຫ້ໄດ້ຜົນທີ່ດີທີ່ສຸດ, ພວກເຮົາແນະນຳໃຫ້ໃຊ້ໂປຣແກຣມທ່ອງເວັບທີ່ໃໝ່ກວ່າ (ຫຼືປິດການນຳໃຊ້ໂໝດຄວາມເຂົ້າກັນໄດ້ໃນ Internet Explorer). ໃນເວລານີ້, ເພື່ອຮັບປະກັນການສະຫນັບສະຫນູນຢ່າງຕໍ່ເນື່ອງ, ພວກເຮົາຈະສະແດງເວັບໄຊທ໌ໂດຍບໍ່ມີຮູບແບບແລະ JavaScript.
ບິນທະຫານສີດໍາ (Hermetia illucens, L. 1758) ເປັນແມງໄມ້ທີ່ທໍາລາຍ omnivorous ທີ່ມີທ່າແຮງສູງສໍາລັບການນໍາໃຊ້ຜະລິດຕະພັນທໍາມະຊາດທີ່ມີຄາໂບໄຮເດດທີ່ອຸດົມສົມບູນ. ໃນບັນດາຄາໂບໄຮເດຣດ, ແມງວັນສີດໍາແມ່ນອີງໃສ່ນ້ໍາຕານທີ່ລະລາຍສໍາລັບການເຕີບໂຕແລະການສັງເຄາະ lipid. ຈຸດປະສົງຂອງການສຶກສານີ້ແມ່ນເພື່ອປະເມີນຜົນຂອງນ້ໍາຕານລະລາຍທົ່ວໄປກ່ຽວກັບການພັດທະນາ, ຄວາມຢູ່ລອດ, ແລະອາຊິດໄຂມັນຂອງແມງວັນທະຫານສີດໍາ. ເສີມອາຫານໄກ່ດ້ວຍ monosaccharides ແລະ disaccharides ແຍກຕ່າງຫາກ. Cellulose ໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ເປັນການຄວບຄຸມ. ຕົວອ່ອນລ້ຽງ glucose, fructose, sucrose, ແລະ maltose ເຕີບໂຕໄວກວ່າຕົວອ່ອນຄວບຄຸມ. ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, lactose ມີຜົນກະທົບທາງໂພຊະນາການຕໍ່ຕົວອ່ອນ, ການເຕີບໂຕຊ້າແລະການຫຼຸດຜ່ອນນ້ໍາຫນັກຂອງຮ່າງກາຍສຸດທ້າຍ. ຢ່າງໃດກໍ່ຕາມ, ນໍ້າຕານທີ່ລະລາຍທັງໝົດເຮັດໃຫ້ຕົວອ່ອນໄຂມັນຫຼາຍກວ່າອາຫານທີ່ໃຫ້ອາຫານຄວບຄຸມ. ໂດຍສະເພາະ, ນ້ ຳ ຕານທີ່ທົດສອບເຮັດໃຫ້ຮູບຮ່າງຂອງກົດໄຂມັນ. Maltose ແລະ sucrose ເພີ່ມປະລິມານອາຊິດໄຂມັນອີ່ມຕົວເມື່ອທຽບກັບ cellulose. ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, lactose ເພີ່ມການສະສົມຊີວະພາບຂອງອາຊິດໄຂມັນ unsaturated ອາຫານ. ການສຶກສານີ້ແມ່ນຄັ້ງທໍາອິດທີ່ສະແດງໃຫ້ເຫັນເຖິງຜົນກະທົບຂອງນ້ໍາຕານທີ່ລະລາຍຕໍ່ອົງປະກອບຂອງອາຊິດໄຂມັນຂອງຕົວອ່ອນແມງວັນສປປລສີດໍາ. ຜົນໄດ້ຮັບຂອງພວກເຮົາຊີ້ໃຫ້ເຫັນວ່າທາດແປ້ງທີ່ທົດສອບມີຜົນກະທົບທີ່ສໍາຄັນຕໍ່ອົງປະກອບຂອງອາຊິດໄຂມັນຂອງຕົວອ່ອນຂອງແມງວັນສປປລສີດໍາແລະດັ່ງນັ້ນອາດຈະກໍານົດຄໍາຮ້ອງສະຫມັກສຸດທ້າຍຂອງພວກເຂົາ.
ຄວາມຕ້ອງການພະລັງງານ ແລະທາດໂປຼຕີນຈາກສັດໃນທົ່ວໂລກ ສືບຕໍ່ເພີ່ມຂຶ້ນ1. ໃນສະພາບການໂລກຮ້ອນ, ມັນເປັນສິ່ງຈຳເປັນທີ່ຈະຊອກຫາທາງເລືອກທີ່ຂຽວອຸ່ມທຸ່ມເພື່ອພະລັງງານຟົດຟື້ນ ແລະ ວິທີຜະລິດອາຫານແບບດັ້ງເດີມໃນຂະນະທີ່ການຜະລິດເພີ່ມຂຶ້ນ. ແມງໄມ້ແມ່ນຜູ້ສະຫມັກທີ່ໃຫ້ຄໍາຫມັ້ນສັນຍາທີ່ຈະແກ້ໄຂບັນຫາເຫຼົ່ານີ້ເນື່ອງຈາກອົງປະກອບຂອງສານເຄມີຕ່ໍາແລະຜົນກະທົບຕໍ່ສິ່ງແວດລ້ອມເມື່ອທຽບກັບການລ້ຽງສັດແບບດັ້ງເດີມ2. ໃນບັນດາແມງໄມ້, ຜູ້ສະຫມັກທີ່ດີເລີດທີ່ຈະແກ້ໄຂບັນຫາເຫຼົ່ານີ້ແມ່ນແມງວັນສປປລສີດໍາ (BSF), Hermetia illucens (L. 1758), ເປັນຊະນິດ detritivorous ທີ່ສາມາດໃຫ້ອາຫານຢູ່ໃນຊະນິດຂອງ substrates ອິນຊີ3. ດັ່ງນັ້ນ, ການໃຫ້ຄຸນຄ່າຂອງສານຍ່ອຍເຫຼົ່ານີ້ຜ່ານການປັບປຸງພັນ BSF ສາມາດສ້າງແຫຼ່ງວັດຖຸດິບໃຫມ່ເພື່ອຕອບສະຫນອງຄວາມຕ້ອງການຂອງອຸດສາຫະກໍາຕ່າງໆ.
ຕົວອ່ອນ BSF (BSFL) ສາມາດໃຫ້ອາຫານຜະລິດຕະພັນກະສິກໍາແລະອຸດສາຫະກໍາກະສິກໍາເຊັ່ນ: ເມັດພືດຂອງຜູ້ຜະລິດ, ພືດຜັກທີ່ຕົກຄ້າງ, ເນື້ອເຍື່ອຫມາກໄມ້ແລະເຂົ້າຈີ່ stale, ເຊິ່ງເຫມາະສົມໂດຍສະເພາະສໍາລັບການຂະຫຍາຍຕົວຂອງ BSFL ເນື່ອງຈາກຄາໂບໄຮເດດສູງ (CH) 4,5, 6 ເນື້ອໃນ. ການຜະລິດຂະຫນາດໃຫຍ່ຂອງ BSFL ເຮັດໃຫ້ເກີດການສ້າງສອງຜະລິດຕະພັນ: ອາຈົມ, ທາດປະສົມຂອງສານຕົກຄ້າງ substrate ແລະອາຈົມທີ່ສາມາດນໍາໃຊ້ເປັນຝຸ່ນສໍາລັບການປູກພືດ 7, ແລະຕົວອ່ອນ, ເຊິ່ງສ່ວນໃຫຍ່ແມ່ນປະກອບດ້ວຍທາດໂປຼຕີນ, lipids ແລະ chitin. ທາດໂປຼຕີນແລະ lipids ສ່ວນໃຫຍ່ແມ່ນໃຊ້ໃນການລ້ຽງສັດ, ນໍ້າມັນເຊື້ອໄຟຊີວະພາບແລະເຄື່ອງສໍາອາງ8,9. ສໍາລັບ chitin, biopolymer ນີ້ພົບເຫັນຄໍາຮ້ອງສະຫມັກໃນຂະແຫນງການກະສິກໍາອາຫານ, ເຕັກໂນໂລຊີຊີວະພາບແລະການດູແລສຸຂະພາບ10.
BSF ເປັນແມງໄມ້ autogenous holometabolous, ຊຶ່ງຫມາຍຄວາມວ່າ metamorphosis ແລະການສືບພັນຂອງມັນ, ໂດຍສະເພາະໄລຍະການບໍລິໂພກພະລັງງານຂອງວົງຈອນຊີວິດຂອງແມງໄມ້, ສາມາດໄດ້ຮັບການສະຫນັບສະຫນູນທັງຫມົດໂດຍສະຫງວນທາດອາຫານທີ່ສ້າງຂຶ້ນໃນໄລຍະການຂະຫຍາຍຕົວຕົວອ່ອນ11. ໂດຍສະເພາະ, ການສັງເຄາະທາດໂປຼຕີນແລະ lipid ນໍາໄປສູ່ການພັດທະນາຂອງຮ່າງກາຍໄຂມັນ, ເປັນອະໄວຍະວະເກັບຮັກສາທີ່ສໍາຄັນທີ່ປ່ອຍພະລັງງານໃນໄລຍະການບໍ່ໃຫ້ອາຫານຂອງ BSF: prepupa (ie, ຂັ້ນຕອນສຸດທ້າຍຂອງຕົວອ່ອນໃນໄລຍະທີ່ຕົວອ່ອນ BSF ປ່ຽນເປັນສີດໍາໃນຂະນະທີ່ໃຫ້ອາຫານແລະຊອກຫາ. ສໍາລັບສະພາບແວດລ້ອມທີ່ເຫມາະສົມສໍາລັບການ metamorphosis), pupae (ie, ຂັ້ນຕອນທີ່ບໍ່ແມ່ນ motile ໃນໄລຍະທີ່ແມງໄມ້ undergo metamorphosis), ແລະຜູ້ໃຫຍ່12,13. CH ແມ່ນແຫຼ່ງພະລັງງານຕົ້ນຕໍໃນອາຫານຂອງ BSF14. ໃນບັນດາສານອາຫານເຫຼົ່ານີ້, CH fibrous ເຊັ່ນ hemicellulose, cellulose ແລະ lignin, ບໍ່ເຫມືອນກັບ disaccharides ແລະ polysaccharides (ເຊັ່ນ: ທາດແປ້ງ), ບໍ່ສາມາດຍ່ອຍໄດ້ໂດຍ BSFL15,16. ການຍ່ອຍອາຫານຂອງ CH ເປັນຂັ້ນຕອນເບື້ອງຕົ້ນທີ່ສໍາຄັນສໍາລັບການດູດຊຶມຂອງຄາໂບໄຮເດດ, ເຊິ່ງສຸດທ້າຍແມ່ນ hydrolyzed ກັບ້ໍາຕານງ່າຍດາຍໃນລໍາໄສ້16. ຫຼັງຈາກນັ້ນ, ນ້ ຳ ຕານທີ່ງ່າຍດາຍສາມາດຖືກດູດຊຶມ (ເຊັ່ນ, ຜ່ານເຍື່ອ peritrophic ລຳ ໄສ້) ແລະຖືກເຜົາຜະຫລານເພື່ອຜະລິດພະລັງງານ 17. ດັ່ງທີ່ໄດ້ກ່າວມາຂ້າງເທິງ, ຕົວອ່ອນເກັບຮັກສາພະລັງງານເກີນເປັນ lipids ໃນຮ່າງກາຍໄຂມັນ12,18. lipids ການເກັບຮັກສາປະກອບດ້ວຍ triglycerides ( lipids ເປັນກາງທີ່ສ້າງຂຶ້ນຈາກຫນຶ່ງ glycerol ໂມເລກຸນແລະສາມອາຊິດໄຂມັນ) ສັງເຄາະໂດຍຕົວອ່ອນຈາກ້ໍາຕານງ່າຍດາຍອາຫານ. CH ເຫຼົ່ານີ້ສະຫນອງ substrates acetyl-CoA ທີ່ຈໍາເປັນສໍາລັບການສັງເຄາະອາຊິດໄຂມັນ (FA) ຜ່ານ synthase ອາຊິດໄຂມັນແລະ thioesterase pathways19. ໂປຣໄຟລຂອງອາຊິດໄຂມັນຂອງ H. illucens lipids ຖືກຄອບງໍາຕາມທໍາມະຊາດໂດຍອາຊິດໄຂມັນອີ່ມຕົວ (SFA) ທີ່ມີອັດຕາສ່ວນສູງຂອງອາຊິດ lauric (C12: 0) 19,20. ດັ່ງນັ້ນ, ປະລິມານ lipid ສູງ ແລະ ອົງປະກອບຂອງອາຊິດໄຂມັນຈຶ່ງກາຍເປັນປັດໃຈຈໍາກັດການໃຊ້ຕົວອ່ອນທັງໝົດໃນອາຫານສັດ, ໂດຍສະເພາະແມ່ນການລ້ຽງປາທີ່ຕ້ອງການກົດໄຂມັນ polyunsaturated (PUFA) 21.
ນັບຕັ້ງແຕ່ການຄົ້ນພົບທ່າແຮງຂອງ BSFL ໃນການຫຼຸດຜ່ອນສິ່ງເສດເຫຼືອທາງອິນຊີ, ການສຶກສາກ່ຽວກັບມູນຄ່າຂອງຜະລິດຕະພັນຕ່າງໆໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າອົງປະກອບຂອງ BSFL ແມ່ນບາງສ່ວນທີ່ຖືກຄວບຄຸມໂດຍອາຫານຂອງມັນ. ໃນປັດຈຸບັນ, ກົດລະບຽບຂອງ FA profile ຂອງ H. illucens ຍັງສືບຕໍ່ປັບປຸງ. ຄວາມສາມາດຂອງ BSFL ໃນການສະສົມຊີວະພາບຂອງ PUFA ໄດ້ຖືກສະແດງໃຫ້ເຫັນຢູ່ໃນ substrates ທີ່ອຸດົມສົມບູນຂອງ PUFA ເຊັ່ນ: algae, ປາ, ຫຼືອາຫານເຊັ່ນ flaxseed, ເຊິ່ງສະຫນອງຄຸນນະພາບຂອງ FA profile ສໍາລັບອາຫານສັດ19,22,23. ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, ສໍາລັບຜະລິດຕະພັນທີ່ບໍ່ໄດ້ຮັບຜົນປະໂຫຍດໃນ PUFA, ບໍ່ມີຄວາມກ່ຽວຂ້ອງກັນສະເຫມີລະຫວ່າງໂປໄຟ FA ຂອງອາຫານແລະ FA ຕົວອ່ອນ, ຊີ້ໃຫ້ເຫັນເຖິງອິດທິພົນຂອງສານອາຫານອື່ນໆ24,25. ໃນຄວາມເປັນຈິງ, ຜົນກະທົບຂອງ CH ທີ່ສາມາດຍ່ອຍໄດ້ໃນໂປຼໄຟລ໌ FA ຍັງຄົງມີຄວາມເຂົ້າໃຈບໍ່ດີແລະຍັງບໍ່ໄດ້ຮັບການຄົ້ນຄວ້າ24,25,26,27.
ໃນຄວາມຮູ້ທີ່ດີທີ່ສຸດຂອງພວກເຮົາ, ເຖິງແມ່ນວ່າ monosaccharides ແລະ disaccharides ທັງຫມົດແມ່ນອຸດົມສົມບູນໃນອາຫານຂອງ H. illucens, ບົດບາດທາງດ້ານໂພຊະນາການຂອງພວກເຂົາຍັງຄົງມີຄວາມເຂົ້າໃຈບໍ່ດີໃນໂພຊະນາການ H. illucens. ຈຸດປະສົງຂອງການສຶກສານີ້ແມ່ນເພື່ອອະທິບາຍຜົນກະທົບຂອງເຂົາເຈົ້າກ່ຽວກັບໂພຊະນາການ BSFL ແລະອົງປະກອບ lipid. ພວກເຮົາຈະປະເມີນການເຕີບໂຕ, ການຢູ່ລອດ, ແລະຜົນຜະລິດຂອງຕົວອ່ອນພາຍໃຕ້ເງື່ອນໄຂໂພຊະນາການທີ່ແຕກຕ່າງກັນ. ຫຼັງຈາກນັ້ນ, ພວກເຮົາຈະອະທິບາຍເນື້ອໃນ lipid ແລະໂປຣໄຟລ໌ອາຊິດໄຂມັນຂອງແຕ່ລະຄາບອາຫານເພື່ອຊີ້ໃຫ້ເຫັນຜົນກະທົບຂອງ CH ກ່ຽວກັບຄຸນນະພາບໂພຊະນາການ BSFL.
ພວກເຮົາສົມມຸດວ່າລັກສະນະຂອງ CH ທີ່ໄດ້ຮັບການທົດສອບຈະສົ່ງຜົນກະທົບຕໍ່ (1) ການຂະຫຍາຍຕົວຂອງຕົວອ່ອນ, (2) ລະດັບ lipid ທັງຫມົດ, ແລະ (3) modulate FA profile. Monosaccharides ສາມາດຖືກດູດຊຶມໂດຍກົງ, ໃນຂະນະທີ່ disaccharides ຕ້ອງໄດ້ຮັບການ hydrolyzed. ດັ່ງນັ້ນ Monosaccharides ແມ່ນມີຢູ່ຫຼາຍເປັນແຫຼ່ງພະລັງງານໂດຍກົງຫຼືເປັນຄາຣະວາສໍາລັບ lipogenesis ຜ່ານທາງ FA synthase ແລະ thioesterase, ດັ່ງນັ້ນການເພີ່ມການຂະຫຍາຍຕົວຂອງຕົວອ່ອນ H. illucens ແລະສົ່ງເສີມການສະສົມຂອງ lipids ສະຫງວນ (ໂດຍສະເພາະອາຊິດ lauric).
CH ທີ່ໄດ້ຮັບການທົດສອບຜົນກະທົບຕໍ່ນ້ໍາຫນັກຕົວສະເລ່ຍຂອງຕົວອ່ອນໃນລະຫວ່າງການເຕີບໃຫຍ່ (ຮູບ 1). FRU, GLU, SUC ແລະ MAL ເພີ່ມນ້ໍາຫນັກຕົວຂອງຕົວອ່ອນທີ່ຄ້າຍຄືກັນກັບອາຫານຄວບຄຸມ (CEL). ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, LAC ແລະ GAL ປະກົດວ່າເຮັດໃຫ້ການພັດທະນາຕົວອ່ອນຊ້າລົງ. ສັງເກດເຫັນ, LAC ມີຜົນກະທົບທາງລົບຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຕໍ່ການເຕີບໂຕຂອງຕົວອ່ອນເມື່ອທຽບໃສ່ກັບ SUC ຕະຫຼອດໄລຍະເວລາການຂະຫຍາຍຕົວ: 9.16 ± 1.10 mg ທຽບກັບ 15.00 ± 1.01 mg ໃນມື້ 3 (F6,21 = 12.77, p < 0.001; Fig. 1), 125.11 ± 4. mg ແລະ 211.79 ± 14.93 mg, ຕາມລໍາດັບ, ໃນມື້ 17 (F6,21 = 38.57, p < 0.001; ຮູບ 1).
ການນໍາໃຊ້ monosaccharides ທີ່ແຕກຕ່າງກັນ (fructose (FRU), galactose (GAL), glucose (GLU)), disaccharides (lactose (LAC), maltose (MAL), sucrose (SUC)) ແລະ cellulose (CEL) ເປັນການຄວບຄຸມ. ການຂະຫຍາຍຕົວຂອງຕົວອ່ອນທີ່ລ້ຽງດ້ວຍຕົວອ່ອນແມງວັນສປປລສີດໍາ. ແຕ່ລະຈຸດຢູ່ໃນເສັ້ນໂຄ້ງສະແດງເຖິງນ້ໍາຫນັກສ່ວນບຸກຄົນ (mg) ຄິດໄລ່ໂດຍການຊັ່ງນໍ້າຫນັກ 20 ຕົວອ່ອນທີ່ເລືອກແບບສຸ່ມຈາກປະຊາກອນ 100 ຕົວອ່ອນ (n = 4). ແຖບຂໍ້ຜິດພາດສະແດງເຖິງ SD.
ອາຫານ CEL ສະຫນອງການຢູ່ລອດຂອງຕົວອ່ອນທີ່ດີເລີດຂອງ 95.5 ± 3.8%. ຍິ່ງໄປກວ່ານັ້ນ, ການຢູ່ລອດຂອງ H. illucens ທີ່ປ້ອນອາຫານທີ່ມີ CH ທີ່ລະລາຍໄດ້ຖືກຫຼຸດລົງ (GLM: χ = 107.13, df = 21, p < 0.001), ເຊິ່ງເກີດມາຈາກ MAL ແລະ SUC (disaccharides) ໃນ CH. ອັດຕາການຕາຍແມ່ນຕໍ່າກວ່າ GLU, FRU, GAL (monosaccharide), ແລະ LAC (EMM: p < 0.001, ຮູບ 2).
Boxplot ຂອງຄວາມຢູ່ລອດຂອງຕົວອ່ອນແມງວັນສປປລສີດໍາທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍ monosaccharides ຕ່າງໆ (fructose, galactose, glucose), disaccharides (lactose, maltose, sucrose) ແລະ cellulose ເປັນການຄວບຄຸມ. ການປິ່ນປົວດ້ວຍຕົວອັກສອນດຽວກັນບໍ່ມີຄວາມແຕກຕ່າງກັນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ (EMM, p > 0.05).
ອາຫານທັງໝົດທີ່ຜ່ານການທົດສອບອະນຸຍາດໃຫ້ຕົວອ່ອນສາມາດບັນລຸຂັ້ນຕອນ prepupal. ຢ່າງໃດກໍ່ຕາມ, CHs ທີ່ທົດສອບມີແນວໂນ້ມທີ່ຈະຍືດອາຍຸການພັດທະນາຕົວອ່ອນ (F6,21=9.60, p<0.001; ຕາຕະລາງ 1). ໂດຍສະເພາະ, ຕົວອ່ອນທີ່ລ້ຽງ GAL ແລະ LAC ໃຊ້ເວລາດົນກວ່າທີ່ຈະມາຮອດຂັ້ນຕອນ prepupal ເມື່ອປຽບທຽບກັບຕົວອ່ອນທີ່ລ້ຽງຢູ່ໃນ CEL (CEL-GAL: p<0.001; CEL-LAC: p<0.001; ຕາຕະລາງ 1).
CH ທີ່ໄດ້ຮັບການທົດສອບຍັງມີຜົນກະທົບທີ່ແຕກຕ່າງກັນຕໍ່ນ້ໍາຫນັກຕົວຂອງຕົວອ່ອນ, ດ້ວຍນ້ໍາຫນັກຕົວຂອງຕົວອ່ອນທີ່ປ້ອນອາຫານ CEL ບັນລຸ 180.19 ± 11.35 mg (F6,21 = 16.86, p < 0.001; Fig. 3). FRU, GLU, MAL ແລະ SUC ເຮັດໃຫ້ມີນ້ໍາຫນັກຕົວຂອງຕົວອ່ອນສຸດທ້າຍໂດຍສະເລ່ຍຫຼາຍກ່ວາ 200 ມລກ, ເຊິ່ງສູງກວ່າ CEL ຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ (p <0.05). ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, ຕົວອ່ອນທີ່ລ້ຽງ GAL ແລະ LAC ມີນ້ໍາຫນັກຕົວຕ່ໍາ, ໂດຍສະເລ່ຍ 177.64 ± 4.23 mg ແລະ 156.30 ± 2.59 mg, ຕາມລໍາດັບ (p <0.05). ຜົນກະທົບນີ້ແມ່ນເຫັນໄດ້ຊັດເຈນກັບ LAC, ບ່ອນທີ່ນ້ໍາຫນັກຕົວສຸດທ້າຍແມ່ນຕ່ໍາກວ່າກັບອາຫານຄວບຄຸມ (CEL-LAC: ຄວາມແຕກຕ່າງ = 23.89 mg; p = 0.03; ຮູບ 3).
ນ້ໍາຫນັກສຸດທ້າຍຂອງຕົວອ່ອນສ່ວນບຸກຄົນສະແດງອອກເປັນຈຸດຕົວອ່ອນ (mg) ແລະແມງວັນສປປລສີດໍາສະແດງອອກເປັນ histogram (g) ປ້ອນ monosaccharides ທີ່ແຕກຕ່າງກັນ (fructose, galactose, glucose), disaccharides (lactose, maltose, sucrose) ແລະ cellulose (ເປັນການຄວບຄຸມ). ຕົວອັກສອນຖັນເປັນຕົວແທນຂອງກຸ່ມທີ່ແຕກຕ່າງກັນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍໃນນ້ໍາຫນັກຕົວອ່ອນທັງຫມົດ (p <0.001). ຕົວອັກສອນທີ່ກ່ຽວຂ້ອງກັບຈຸດຂອງຕົວອ່ອນເປັນຕົວແທນຂອງກຸ່ມທີ່ມີນ້ໍາຫນັກຕົວຂອງຕົວອ່ອນທີ່ແຕກຕ່າງກັນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ (p <0.001). ແຖບຂໍ້ຜິດພາດສະແດງເຖິງ SD.
ນ້ຳໜັກສ່ວນບຸກຄົນສູງສຸດບໍ່ຂຶ້ນກັບນ້ຳໜັກຕົວຂອງຕົວອ່ອນສຸດທ້າຍ. ໃນຄວາມເປັນຈິງ, ອາຫານທີ່ມີ FRU, GLU, MAL, ແລະ SUC ບໍ່ໄດ້ເພີ່ມນ້ໍາຫນັກຕົວອ່ອນທັງຫມົດທີ່ຜະລິດຢູ່ໃນຖັງທຽບກັບ CEL (ຮູບ 3). ຢ່າງໃດກໍ່ຕາມ, LAC ຫຼຸດລົງຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຂອງນ້ໍາຫນັກລວມ (CEL-LAC: ຄວາມແຕກຕ່າງ = 9.14 g; p < 0.001; ຮູບ 3).
ຕາຕະລາງ 1 ສະແດງໃຫ້ເຫັນຜົນຜະລິດ (ຕົວອ່ອນ/ມື້). ຫນ້າສົນໃຈ, ຜົນຜະລິດທີ່ດີທີ່ສຸດຂອງ CEL, MAL ແລະ SUC ແມ່ນຄ້າຍຄືກັນ (ຕາຕະລາງ 1). ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, FRU, GAL, GLU ແລະ LAC ຫຼຸດລົງຜົນຜະລິດເມື່ອທຽບກັບ CEL (ຕາຕະລາງ 1). GAL ແລະ LAC ປະຕິບັດໄດ້ບໍ່ດີທີ່ສຸດ: ຜົນຜະລິດໄດ້ຖືກຫຼຸດລົງເຄິ່ງຫນຶ່ງເປັນພຽງແຕ່ 0.51 ± 0.09 g ຕົວອ່ອນ / ມື້ແລະ 0.48 ± 0.06 g ຕົວອ່ອນ / ມື້, ຕາມລໍາດັບ (ຕາຕະລາງ 1).
Monosaccharides ແລະ disaccharides ເພີ່ມເນື້ອໃນ lipid ຂອງຕົວອ່ອນ CF (ຕາຕະລາງ 1). ກ່ຽວກັບອາຫານ CLE, ຕົວອ່ອນທີ່ມີເນື້ອໃນ lipid ຂອງ 23.19 ± 0.70% ຂອງເນື້ອໃນ DM ໄດ້ຮັບ. ສໍາລັບການປຽບທຽບ, ເນື້ອໃນ lipid ສະເລ່ຍໃນຕົວອ່ອນທີ່ປ້ອນດ້ວຍນ້ໍາຕານທີ່ລະລາຍແມ່ນຫຼາຍກ່ວາ 30% (ຕາຕະລາງ 1). ຢ່າງໃດກໍ່ຕາມ, CHs ທີ່ທົດສອບໄດ້ເພີ່ມປະລິມານໄຂມັນຂອງພວກເຂົາໃນລະດັບດຽວກັນ.
ຕາມທີ່ຄາດໄວ້, ວິຊາ CG ໄດ້ສົ່ງຜົນກະທົບຕໍ່ FA profile ຂອງຕົວອ່ອນໃຫ້ແຕກຕ່າງກັນ (ຮູບ 4). ເນື້ອໃນ SFA ແມ່ນສູງໃນອາຫານທັງຫມົດແລະບັນລຸຫຼາຍກ່ວາ 60%. MAL ແລະ SUC ບໍ່ສົມດຸນກັບໂປຣໄຟລ໌ FA, ເຊິ່ງເຮັດໃຫ້ເນື້ອໃນ SFA ເພີ່ມຂຶ້ນ. ໃນກໍລະນີຂອງ MAL, ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, ຄວາມບໍ່ສົມດຸນນີ້ນໍາໄປສູ່ການຫຼຸດລົງຂອງເນື້ອໃນຂອງອາຊິດໄຂມັນ monounsaturated (MUFA) (F6,21 = 7.47; p < 0.001; ຮູບ 4). ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, ສໍາລັບ SUC, ການຫຼຸດລົງແມ່ນມີຄວາມເປັນເອກະພາບຫຼາຍລະຫວ່າງ MUFA ແລະ PUFA. LAC ແລະ MAL ມີຜົນກະທົບກົງກັນຂ້າມກັບ FA spectrum (SFA: F6,21 = 8.74; p < 0.001; MUFA: F6,21 = 7.47; p < 0.001; PUFA: χ2 = 19.60; Df = 6; p < 0.001; Figure 4). ອັດຕາສ່ວນຕ່ໍາຂອງ SFA ໃນຕົວອ່ອນທີ່ລ້ຽງ LAC ເບິ່ງຄືວ່າຈະເພີ່ມເນື້ອໃນ MUFA. ໂດຍສະເພາະ, ລະດັບ MUFA ແມ່ນສູງກວ່າຕົວອ່ອນຂອງ LAC ເມື່ອທຽບກັບນ້ໍາຕານທີ່ລະລາຍອື່ນໆ, ຍົກເວັ້ນ GAL (F6,21 = 7.47; p < 0.001; ຮູບ 4).
ການນໍາໃຊ້ monosaccharides ທີ່ແຕກຕ່າງກັນ (fructose (FRU), galactose (GAL), glucose (GLU)), disaccharides (lactose (LAC), maltose (MAL), sucrose (SUC)) ແລະ cellulose (CEL) ເປັນການຄວບຄຸມ, ກ່ອງຂອງອາຊິດໄຂມັນ. ອົງປະກອບທີ່ປ້ອນກັບຕົວອ່ອນຂອງແມງວັນສປປລສີດໍາ. ຜົນໄດ້ຮັບສະແດງອອກເປັນເປີເຊັນຂອງ FAME ທັງໝົດ. ການປິ່ນປົວທີ່ຫມາຍດ້ວຍຕົວອັກສອນທີ່ແຕກຕ່າງກັນແມ່ນແຕກຕ່າງກັນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ (p <0.001). (a) ອັດຕາສ່ວນຂອງອາຊິດໄຂມັນອີ່ມຕົວ; (b) ອາຊິດໄຂມັນ Monounsaturated; (c) ອາຊິດໄຂມັນ polyunsaturated.
ໃນບັນດາອາຊິດໄຂມັນທີ່ລະບຸໄວ້, ອາຊິດ lauric (C12:0) ແມ່ນເດັ່ນໃນສະແດງໃຫ້ເຫັນທັງຫມົດ (ຫຼາຍກ່ວາ 40%). SFAs ອື່ນໆໃນປະຈຸບັນແມ່ນອາຊິດ palmitic (C16:0) (ຫນ້ອຍກວ່າ 10%), ອາຊິດ stearic (C18:0) (ຫນ້ອຍກວ່າ 2.5%) ແລະອາຊິດ capric (C10:0) (ຫນ້ອຍກວ່າ 1.5%). MUFAs ສ່ວນໃຫຍ່ແມ່ນເປັນຕົວແທນໂດຍອາຊິດ oleic (C18:1n9) (ຫນ້ອຍກວ່າ 9.5%), ໃນຂະນະທີ່ PUFAs ສ່ວນໃຫຍ່ແມ່ນປະກອບດ້ວຍອາຊິດ linoleic (C18:2n6) (ຫນ້ອຍກວ່າ 13.0%) (ເບິ່ງຕາຕະລາງເສີມ S1). ນອກຈາກນັ້ນ, ອັດຕາສ່ວນເລັກນ້ອຍຂອງທາດປະສົມບໍ່ສາມາດລະບຸໄດ້, ໂດຍສະເພາະໃນສະເປກຂອງຕົວອ່ອນ CEL, ບ່ອນທີ່ສານປະສົມທີ່ບໍ່ໄດ້ລະບຸຕົວເລກ 9 (UND9) ກວມເອົາສະເລ່ຍຂອງ 2.46 ± 0.52% (ເບິ່ງຕາຕະລາງເສີມ S1). ການວິເຄາະ GC × GC-FID ແນະນໍາວ່າມັນອາດຈະເປັນອາຊິດໄຂມັນ 20 ຄາບອນທີ່ມີຫ້າຫຼືຫົກພັນທະບັດຄູ່ (ເບິ່ງຮູບເສີມ S5).
ການວິເຄາະ PERMANOVA ເປີດເຜີຍສາມກຸ່ມທີ່ແຕກຕ່າງກັນໂດຍອີງໃສ່ໂປຣໄຟລ໌ອາຊິດໄຂມັນ (F6,21 = 7.79, p < 0.001; ຮູບ 5). ການວິເຄາະອົງປະກອບຫຼັກ (PCA) ຂອງ TBC spectrum ສະແດງໃຫ້ເຫັນເລື່ອງນີ້ແລະຖືກອະທິບາຍໂດຍສອງອົງປະກອບ (ຮູບ 5). ອົງປະກອບຕົ້ນຕໍໄດ້ອະທິບາຍເຖິງ 57.9% ຂອງຄວາມຜັນຜວນ ແລະລວມເອົາ, ຕາມລໍາດັບຄວາມສໍາຄັນ, ອາຊິດ lauric (C12:0), ອາຊິດ oleic (C18:1n9), ອາຊິດ palmitic (C16:0), ອາຊິດ stearic (C18:0), ແລະ. ອາຊິດ linolenic (C18:3n3) (ເບິ່ງຮູບ S4). ອົງປະກອບທີສອງໄດ້ອະທິບາຍເຖິງ 26.3% ຂອງຄວາມແຕກຕ່າງແລະລວມ, ຕາມລໍາດັບຄວາມສໍາຄັນ, ອາຊິດ decanoic (C10: 0) ແລະອາຊິດ linoleic (C18: 2n6 cis) (ເບິ່ງຮູບເສີມ S4). ໂປຼໄຟລ໌ຂອງອາຫານທີ່ມີນໍ້າຕານງ່າຍດາຍ (FRU, GAL ແລະ GLU) ສະແດງໃຫ້ເຫັນລັກສະນະທີ່ຄ້າຍຄືກັນ. ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, disaccharides ໃຫ້ຜົນໄດ້ຮັບທີ່ແຕກຕ່າງກັນ: MAL ແລະ SUC ຢູ່ໃນມືຫນຶ່ງແລະ LAC ໃນອີກດ້ານຫນຶ່ງ. ໂດຍສະເພາະ, MAL ແມ່ນນ້ໍາຕານດຽວທີ່ປ່ຽນໂປຣໄຟລ໌ FA ທຽບກັບ CEL. ນອກຈາກນັ້ນ, ໂປຣໄຟລ໌ MAL ແມ່ນແຕກຕ່າງກັນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຈາກໂປຣໄຟລ໌ FRU ແລະ GLU. ໂດຍສະເພາະ, ໂປຣໄຟລ໌ MAL ສະແດງໃຫ້ເຫັນອັດຕາສ່ວນສູງສຸດຂອງ C12:0 (54.59 ± 2.17%), ເຮັດໃຫ້ມັນທຽບກັບ CEL (43.10 ± 5.01%), LAC (43.35 ± 1.31%), FRU (48.90 ± 1.97%) ແລະ ໂປຼໄຟລ໌ GLU (48.38 ± 2.17%) (ເບິ່ງຕາຕະລາງເສີມ S1). spectrum MAL ຍັງສະແດງໃຫ້ເຫັນເນື້ອໃນ C18:1n9 ຕ່ໍາສຸດ (9.52 ± 0.50%), ເຊິ່ງເຮັດໃຫ້ຄວາມແຕກຕ່າງເພີ່ມເຕີມຈາກ LAC (12.86 ± 0.52%) ແລະ CEL (12.40 ± 1.31%) spectra. ແນວໂນ້ມທີ່ຄ້າຍຄືກັນໄດ້ຖືກສັງເກດເຫັນສໍາລັບ C16:0. ໃນອົງປະກອບທີສອງ, LAC spectrum ສະແດງໃຫ້ເຫັນເນື້ອໃນ C18:2n6 ສູງສຸດ (17.22 ± 0.46%), ໃນຂະນະທີ່ MAL ສະແດງໃຫ້ເຫັນຕ່ໍາສຸດ (12.58 ± 0.67%). C18:2n6 ຍັງໄດ້ແຍກຄວາມແຕກຕ່າງຂອງ LAC ຈາກການຄວບຄຸມ (CEL), ເຊິ່ງສະແດງໃຫ້ເຫັນລະດັບຕ່ໍາ (13.41 ± 2.48%) (ເບິ່ງຕາຕະລາງເສີມ S1).
ແຜນ PCA ຂອງອາຊິດໄຂມັນຂອງຕົວອ່ອນແມງວັນທະຫານສີດໍາທີ່ມີ monosaccharides ທີ່ແຕກຕ່າງກັນ (fructose, galactose, glucose), disaccharides (lactose, maltose, sucrose) ແລະ cellulose ເປັນການຄວບຄຸມ.
ເພື່ອສຶກສາຜົນກະທົບທາງໂພຊະນາການຂອງນໍ້າຕານທີ່ລະລາຍໃນຕົວອ່ອນ H. illucens, cellulose (CEL) ໃນອາຫານໄກ່ໄດ້ຖືກທົດແທນດ້ວຍ glucose (GLU), fructose (FRU), galactose (GAL), maltose (MAL), sucrose (SUC), ແລະ. lactose (LAC). ຢ່າງໃດກໍ່ຕາມ, monosaccharides ແລະ disaccharides ມີຜົນກະທົບທີ່ແຕກຕ່າງກັນຕໍ່ການພັດທະນາ, ການຢູ່ລອດ, ແລະອົງປະກອບຂອງຕົວອ່ອນ HF. ຕົວຢ່າງເຊັ່ນ, GLU, FRU, ແລະຮູບແບບ disaccharide ຂອງພວກເຂົາ (MAL ແລະ SUC) ມີຜົນກະທົບທາງບວກຕໍ່ການເຕີບໂຕຂອງຕົວອ່ອນ, ໃຫ້ພວກເຂົາບັນລຸນ້ໍາຫນັກສຸດທ້າຍສູງກວ່າ CEL. ບໍ່ຄືກັບ CEL, GLU, FRU, ແລະ SUC ທີ່ບໍ່ສາມາດຍ່ອຍໄດ້ສາມາດຂ້າມອຸປະສັກກະເພາະລໍາໄສ້ແລະເປັນແຫຼ່ງທາດອາຫານທີ່ສໍາຄັນໃນອາຫານສູດ16,28. MAL ຂາດການຂົນສົ່ງສັດສະເພາະ ແລະຖືກຄິດວ່າຈະຖືກ hydrolyzed ເປັນສອງໂມເລກຸນ glucose ກ່ອນທີ່ຈະ assimilation15. ໂມເລກຸນເຫຼົ່ານີ້ຖືກເກັບໄວ້ໃນຮ່າງກາຍຂອງແມງໄມ້ເປັນແຫຼ່ງພະລັງງານໂດຍກົງຫຼືເປັນ lipids18. ຫນ້າທໍາອິດ, ກ່ຽວກັບເລື່ອງສຸດທ້າຍ, ຄວາມແຕກຕ່າງຂອງ intramodal ສັງເກດເຫັນບາງຢ່າງອາດຈະເປັນຍ້ອນຄວາມແຕກຕ່າງຂະຫນາດນ້ອຍໃນອັດຕາສ່ວນທາງເພດ. ແທ້ຈິງແລ້ວ, ໃນ H. illucens, ການສືບພັນອາດຈະເກີດຂຶ້ນໂດຍທໍາມະຊາດ: ແມ່ຍິງຜູ້ໃຫຍ່ໂດຍທໍາມະຊາດມີສະຫງວນການວາງໄຂ່ທີ່ພຽງພໍແລະຫນັກກວ່າເພດຊາຍ29. ຢ່າງໃດກໍ່ຕາມ, ການສະສົມ lipid ໃນ BSFL ກ່ຽວຂ້ອງກັບການໄດ້ຮັບ CH2 ທີ່ລະລາຍໃນຄາບອາຫານ, ດັ່ງທີ່ໄດ້ສັງເກດເຫັນກ່ອນຫນ້ານີ້ສໍາລັບ GLU ແລະ xylose26,30. ຕົວຢ່າງ, Li et al.30 ສັງເກດເຫັນວ່າເມື່ອ 8% GLU ຖືກເພີ່ມເຂົ້າໃນອາຫານຂອງຕົວອ່ອນ, ເນື້ອໃນ lipid ຂອງຕົວອ່ອນ BSF ເພີ່ມຂຶ້ນ 7.78% ເມື່ອທຽບກັບການຄວບຄຸມ. ຜົນໄດ້ຮັບຂອງພວກເຮົາແມ່ນສອດຄ່ອງກັບການສັງເກດການເຫຼົ່ານີ້, ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າເນື້ອໃນໄຂມັນໃນຕົວອ່ອນທີ່ລ້ຽງນໍ້າຕານທີ່ລະລາຍໄດ້ສູງກວ່າຕົວອ່ອນທີ່ລ້ຽງອາຫານ CEL, ເມື່ອທຽບກັບການເພີ່ມ GLU 8.57%. ເປັນເລື່ອງແປກທີ່, ຜົນໄດ້ຮັບທີ່ຄ້າຍຄືກັນໄດ້ຖືກສັງເກດເຫັນຢູ່ໃນຕົວອ່ອນ GAL ແລະ LAC, ເຖິງວ່າຈະມີຜົນກະທົບທາງລົບຕໍ່ການເຕີບໂຕຂອງຕົວອ່ອນ, ນ້ໍາຫນັກຕົວສຸດທ້າຍ, ແລະການຢູ່ລອດ. ຕົວອ່ອນທີ່ລ້ຽງ LAC ແມ່ນນ້ອຍກວ່າທີ່ໃຫ້ອາຫານ CEL ຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ, ແຕ່ປະລິມານໄຂມັນຂອງພວກມັນແມ່ນທຽບກັບຕົວອ່ອນທີ່ລ້ຽງນໍ້າຕານທີ່ລະລາຍອື່ນໆ. ຜົນໄດ້ຮັບເຫຼົ່ານີ້ຊີ້ໃຫ້ເຫັນຜົນກະທົບທາງໂພຊະນາການຂອງ lactose ໃນ BSFL. ຫນ້າທໍາອິດ, ອາຫານມີຈໍານວນຂະຫນາດໃຫຍ່ຂອງ CH. ລະບົບການດູດຊຶມແລະ hydrolysis ຂອງ monosaccharides ແລະ disaccharides, ຕາມລໍາດັບ, ອາດຈະບັນລຸການອີ່ມຕົວ, ເຊິ່ງກໍ່ໃຫ້ເກີດການກັດຂວດໃນຂະບວນການປະສົມ. ສໍາລັບ hydrolysis, ມັນຖືກປະຕິບັດໂດຍ α- ແລະ β-glucosidases 31 . enzymes ເຫຼົ່ານີ້ມີ substrates ທີ່ຕ້ອງການໂດຍອີງຕາມຂະຫນາດຂອງເຂົາເຈົ້າແລະພັນທະບັດເຄມີ (αຫຼືβເຊື່ອມຕໍ່) ລະຫວ່າງ monosaccharides 15 ຂອງເຂົາເຈົ້າ. Hydrolysis ຂອງ LAC ກັບ GLU ແລະ GAL ແມ່ນດໍາເນີນໂດຍ β-galactosidase, enzyme ທີ່ມີກິດຈະກໍາໄດ້ຖືກສະແດງໃຫ້ເຫັນຢູ່ໃນລໍາໄສ້ຂອງ BSF 32 . ຢ່າງໃດກໍ່ຕາມ, ການສະແດງອອກຂອງມັນອາດຈະບໍ່ພຽງພໍເມື່ອທຽບກັບປະລິມານຂອງ LAC ທີ່ບໍລິໂພກໂດຍຕົວອ່ອນ. ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, α-glucosidase maltase ແລະ sucrase 15, ເຊິ່ງຮູ້ວ່າຖືກສະແດງອອກຢ່າງອຸດົມສົມບູນໃນແມງໄມ້, ສາມາດທໍາລາຍ MAL ແລະ sucrose SUC ຈໍານວນຫຼວງຫຼາຍ, ດັ່ງນັ້ນການຈໍາກັດຜົນກະທົບທີ່ອີ່ມຕົວນີ້. ອັນທີສອງ, ຜົນກະທົບທາງໂພຊະນາການອາດຈະເປັນຍ້ອນການຫຼຸດຜ່ອນການກະຕຸ້ນຂອງກິດຈະກໍາ amylase ລໍາໄສ້ຂອງແມງໄມ້ແລະການຊັກຊ້າຂອງພຶດຕິກໍາການໃຫ້ອາຫານເມື່ອທຽບກັບການປິ່ນປົວອື່ນໆ. ແທ້ຈິງແລ້ວ, ນ້ ຳ ຕານທີ່ລະລາຍໄດ້ຖືກລະບຸວ່າເປັນຕົວກະຕຸ້ນຂອງກິດຈະ ກຳ ຂອງເອນໄຊທີ່ ສຳ ຄັນຕໍ່ການຍ່ອຍອາຫານຂອງແມງໄມ້, ເຊັ່ນ amylase, ແລະເປັນຜົນກະທົບຕໍ່ການຕອບສະ ໜອງ ຂອງອາຫານ33,34,35. ລະດັບການກະຕຸ້ນແມ່ນແຕກຕ່າງກັນໄປຕາມໂຄງສ້າງໂມເລກຸນຂອງນໍ້າຕານ. ໃນຄວາມເປັນຈິງ, disaccharides ຕ້ອງການ hydrolysis ກ່ອນທີ່ຈະດູດຊຶມແລະມີແນວໂນ້ມທີ່ຈະກະຕຸ້ນ amylase ຫຼາຍກ່ວາ monosaccharides34 ອົງປະກອບຂອງພວກມັນ. ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, LAC ມີຜົນກະທົບອ່ອນໆແລະໄດ້ຖືກພົບເຫັນວ່າບໍ່ສາມາດສະຫນັບສະຫນູນການຂະຫຍາຍຕົວຂອງແມງໄມ້ໃນຊະນິດຕ່າງໆ33,35. ຕົວຢ່າງ, ໃນສັດຕູພືດ Spodoptera exigua (Boddie 1850), ບໍ່ມີກິດຈະກໍາ hydrolytic ຂອງ LAC ໄດ້ຖືກກວດພົບໃນສານສະກັດຈາກ caterpillar midgut enzymes36.
ກ່ຽວກັບ FA spectrum, ຜົນໄດ້ຮັບຂອງພວກເຮົາຊີ້ໃຫ້ເຫັນເຖິງຜົນກະທົບ modulatory ທີ່ສໍາຄັນຂອງ CH ທົດສອບ. ເປັນທີ່ຫນ້າສັງເກດ, ເຖິງແມ່ນວ່າອາຊິດ lauric (C12: 0) ກວມເອົາຫນ້ອຍກວ່າ 1% ຂອງ FA ທັງຫມົດໃນອາຫານ, ມັນໄດ້ຄອບງໍາໃນທຸກໂປຣໄຟລ໌ (ເບິ່ງຕາຕະລາງເສີມ S1). ນີ້ແມ່ນສອດຄ່ອງກັບຂໍ້ມູນທີ່ຜ່ານມາວ່າອາຊິດ lauric ຖືກສັງເຄາະຈາກອາຫານ CH ໃນ H. illucens ຜ່ານເສັ້ນທາງທີ່ກ່ຽວຂ້ອງກັບ acetyl-CoA carboxylase ແລະ FA synthase19,27,37. ຜົນໄດ້ຮັບຂອງພວກເຮົາຢືນຢັນວ່າ CEL ແມ່ນ indigestible ສ່ວນໃຫຍ່ແລະເຮັດຫນ້າທີ່ເປັນ "bulking agent" ໃນອາຫານຄວບຄຸມ BSF, ດັ່ງທີ່ໄດ້ສົນທະນາໃນ BSFL ຫຼາຍໆການສຶກສາ38,39,40. ການທົດແທນ CEL ດ້ວຍ monosaccharides ແລະ disaccharides ນອກເຫນືອຈາກ LAC ໄດ້ເພີ່ມອັດຕາສ່ວນ C12:0, ຊີ້ໃຫ້ເຫັນເຖິງການເພີ່ມຂຶ້ນຂອງ CH ໂດຍຕົວອ່ອນ. ເປັນທີ່ຫນ້າສົນ, disaccharides MAL ແລະ SUC ສົ່ງເສີມການສັງເຄາະອາຊິດ lauric ໄດ້ປະສິດທິພາບຫຼາຍກ່ວາ monosaccharides ອົງປະກອບຂອງເຂົາເຈົ້າ, ແນະນໍາວ່າເຖິງວ່າຈະມີລະດັບສູງຂອງ polymerization ຂອງ GLU ແລະ FRU, ແລະເນື່ອງຈາກວ່າ Drosophila ເປັນພຽງແຕ່ການຂົນສົ່ງ sucrose ທີ່ໄດ້ຖືກກໍານົດຢູ່ໃນຊະນິດທາດໂປຼຕີນຈາກສັດ, disaccharide transporters. ອາດຈະບໍ່ມີຢູ່ໃນລໍາໄສ້ຂອງຕົວອ່ອນ H. illucens15, ການນໍາໃຊ້ ຂອງ GLU ແລະ FRU ແມ່ນເພີ່ມຂຶ້ນ. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ເຖິງແມ່ນວ່າ GLU ແລະ FRU ໄດ້ຖືກ metabolized ງ່າຍໂດຍ BSF ໃນທາງທິດສະດີ, ພວກມັນຍັງຖືກ metabolized ໄດ້ງ່າຍກວ່າໂດຍ substrates ແລະຈຸລິນຊີໃນລໍາໄສ້, ເຊິ່ງອາດຈະເຮັດໃຫ້ການເຊື່ອມໂຊມໄວແລະການຫຼຸດລົງຂອງການນໍາໃຊ້ຕົວອ່ອນເມື່ອທຽບກັບ disaccharides.
ຢູ່ glance ທໍາອິດ, ເນື້ອໃນ lipid ຂອງຕົວອ່ອນທີ່ປ້ອນ LAC ແລະ MAL ແມ່ນປຽບທຽບ, ຊີ້ໃຫ້ເຫັນເຖິງຊີວະພາບທີ່ຄ້າຍຄືກັນຂອງ້ໍາຕານເຫຼົ່ານີ້. ຢ່າງໃດກໍ່ຕາມ, ເປັນເລື່ອງແປກທີ່, ຂໍ້ມູນ FA ຂອງ LAC ແມ່ນອຸດົມສົມບູນໃນ SFA, ໂດຍສະເພາະກັບເນື້ອໃນ C12: 0 ຕ່ໍາ, ເມື່ອທຽບກັບ MAL. ສົມມຸດຕິຖານຫນຶ່ງເພື່ອອະທິບາຍຄວາມແຕກຕ່າງນີ້ແມ່ນວ່າ LAC ອາດຈະກະຕຸ້ນການສະສົມຊີວະພາບຂອງ FA ອາຫານໂດຍຜ່ານ acetyl-CoA FA synthase. ສະຫນັບສະຫນູນສົມມຸດຕິຖານນີ້, ຕົວອ່ອນ LAC ມີອັດຕາສ່ວນ decanoate ຕ່ໍາສຸດ (C10:0) (0.77 ± 0.13%) ກ່ວາອາຫານ CEL (1.27 ± 0.16%), ຊີ້ໃຫ້ເຫັນເຖິງການຫຼຸດລົງຂອງ FA synthase ແລະກິດຈະກໍາ thioesterase19. ອັນທີສອງ, ອາຊິດໄຂມັນໃນອາຫານແມ່ນຖືວ່າເປັນປັດໃຈຕົ້ນຕໍທີ່ມີອິດທິພົນຕໍ່ອົງປະກອບ SFA ຂອງ H. illucens27. ໃນການທົດລອງຂອງພວກເຮົາ, ອາຊິດ linoleic (C18: 2n6) ກວມເອົາ 54.81% ຂອງອາຊິດໄຂມັນໃນອາຫານ, ອັດຕາສ່ວນຢູ່ໃນຕົວອ່ອນ LAC ແມ່ນ 17.22 ± 0.46% ແລະໃນ MAL 12.58 ± 0.67%. ອາຊິດ Oleic (cis + trans C18: 1n9) (23.22% ໃນອາຫານ) ສະແດງໃຫ້ເຫັນແນວໂນ້ມທີ່ຄ້າຍຄືກັນ. ອັດຕາສ່ວນຂອງອາຊິດ α-linolenic (C18: 3n3) ຍັງສະຫນັບສະຫນູນສົມມຸດຕິຖານການສະສົມຊີວະພາບ. ອາຊິດໄຂມັນນີ້ແມ່ນເປັນທີ່ຮູ້ຈັກທີ່ຈະສະສົມຢູ່ໃນ BSFL ເມື່ອການເສີມສ້າງ substrate, ເຊັ່ນ: ການເພີ່ມເຄ້ກ flaxseed, ເຖິງ 6-9% ຂອງອາຊິດໄຂມັນທັງຫມົດໃນຕົວອ່ອນ 19. ໃນອາຫານທີ່ອຸດົມສົມບູນ, C18:3n3 ສາມາດກວມເອົາເຖິງ 35% ຂອງອາຊິດໄຂມັນໃນອາຫານທັງຫມົດ. ຢ່າງໃດກໍ່ຕາມ, ໃນການສຶກສາຂອງພວກເຮົາ, C18: 3n3 ກວມເອົາພຽງແຕ່ 2.51% ຂອງໂປຣໄຟລ໌ອາຊິດໄຂມັນ. ເຖິງແມ່ນວ່າອັດຕາສ່ວນທີ່ພົບເຫັນຢູ່ໃນທໍາມະຊາດແມ່ນຕ່ໍາໃນຕົວອ່ອນຂອງພວກເຮົາ, ອັດຕາສ່ວນນີ້ແມ່ນສູງກວ່າຕົວອ່ອນຂອງ LAC (0.87 ± 0.02%) ກ່ວາຢູ່ໃນ MAL (0.49 ± 0.04%) (p < 0.001; ເບິ່ງຕາຕະລາງເສີມ S1). ອາຫານ CEL ມີອັດຕາສ່ວນກາງຂອງ 0.72 ± 0.18%. ສຸດທ້າຍ, ອັດຕາສ່ວນອາຊິດ palmitic (C16:0) ໃນຕົວອ່ອນ CF ສະທ້ອນໃຫ້ເຫັນເຖິງການປະກອບສ່ວນຂອງເສັ້ນທາງສັງເຄາະແລະອາຫານ FA19. Hoc et al. 19 ສັງເກດເຫັນວ່າການສັງເຄາະ C16: 0 ຖືກຫຼຸດລົງເມື່ອອາຫານທີ່ອຸດົມດ້ວຍອາຫານ flaxseed, ເຊິ່ງຖືວ່າເປັນການຫຼຸດລົງຂອງຄວາມພ້ອມຂອງ substrate acetyl-CoA ເນື່ອງຈາກການຫຼຸດລົງຂອງອັດຕາສ່ວນ CH. ເປັນເລື່ອງແປກທີ່, ເຖິງແມ່ນວ່າອາຫານທັງສອງມີເນື້ອໃນ CH ທີ່ຄ້າຍຄືກັນແລະ MAL ສະແດງໃຫ້ເຫັນເຖິງ bioavailability ສູງກວ່າ, ຕົວອ່ອນ MAL ສະແດງໃຫ້ເຫັນອັດຕາສ່ວນ C16:0 ຕ່ໍາສຸດ (10.46 ± 0.77%), ໃນຂະນະທີ່ LAC ສະແດງໃຫ້ເຫັນອັດຕາສ່ວນທີ່ສູງກວ່າ, ກວມເອົາ 12.85 ± 0.27% (p <0.05; ເບິ່ງ. ຕາຕະລາງເສີມ S1). ຜົນໄດ້ຮັບເຫຼົ່ານີ້ຊີ້ໃຫ້ເຫັນອິດທິພົນສະລັບສັບຊ້ອນຂອງສານອາຫານກ່ຽວກັບການຍ່ອຍອາຫານ BSFL ແລະ metabolism. ໃນປັດຈຸບັນ, ການຄົ້ນຄວ້າກ່ຽວກັບຫົວຂໍ້ນີ້ແມ່ນຢ່າງລະອຽດໃນ Lepidoptera ຫຼາຍກ່ວາໃນ Diptera. ໃນ caterpillars, LAC ໄດ້ຖືກກໍານົດວ່າເປັນຕົວກະຕຸ້ນທີ່ອ່ອນແອຂອງພຶດຕິກໍາການໃຫ້ອາຫານເມື່ອທຽບກັບນ້ໍາຕານທີ່ລະລາຍອື່ນໆເຊັ່ນ SUC ແລະ FRU34,35. ໂດຍສະເພາະ, ໃນ Spodopteralittoralis (Boisduval 1833), ການບໍລິໂພກ MAL ໄດ້ກະຕຸ້ນການເຄື່ອນໄຫວຂອງ amylolytic ໃນລໍາໄສ້ໃນຂອບເຂດຫຼາຍກ່ວາ LAC34. ຜົນກະທົບທີ່ຄ້າຍຄືກັນໃນ BSFL ອາດຈະອະທິບາຍເຖິງການປັບປຸງການກະຕຸ້ນຂອງເສັ້ນທາງສັງເຄາະ C12:0 ໃນຕົວອ່ອນຂອງ MAL, ເຊິ່ງກ່ຽວຂ້ອງກັບການເພີ່ມຂື້ນຂອງ CH ທີ່ດູດຊຶມໃນລໍາໄສ້, ການໃຫ້ອາຫານດົນນານ, ແລະການປະຕິບັດ amylase ໃນລໍາໄສ້. ການກະຕຸ້ນຈັງຫວະການໃຫ້ອາຫານໜ້ອຍລົງໃນທີ່ປະທັບຂອງ LAC ອາດຈະອະທິບາຍເຖິງການເຕີບໂຕຊ້າຂອງຕົວອ່ອນ LAC. ຍິ່ງໄປກວ່ານັ້ນ, Liu Yanxia et al. 27 ສັງເກດເຫັນວ່າອາຍຸການເກັບຮັກສາຂອງ lipids ໃນຊັ້ນຍ່ອຍ H. illucens ແມ່ນຍາວກວ່າຂອງ CH. ດັ່ງນັ້ນ, ຕົວອ່ອນຂອງ LAC ອາດຈະອີງໃສ່ຫຼາຍກ່ຽວກັບ lipids ໃນຄາບອາຫານເພື່ອເຮັດສໍາເລັດການພັດທະນາຂອງມັນ, ເຊິ່ງອາດຈະເພີ່ມເນື້ອໃນ lipid ສຸດທ້າຍຂອງພວກເຂົາແລະດັດແປງໂປຣໄຟລ໌ອາຊິດໄຂມັນຂອງພວກເຂົາ.
ເພື່ອຄວາມຮູ້ທີ່ດີທີ່ສຸດຂອງພວກເຮົາ, ມີພຽງແຕ່ການສຶກສາຈໍານວນຫນ້ອຍຫນຶ່ງທີ່ໄດ້ທົດສອບຜົນກະທົບຂອງ monosaccharide ແລະ disaccharide ເພີ່ມເຕີມຕໍ່ກັບອາຫານ BSF ໃນໂປຼໄຟລ໌ FA ຂອງພວກເຂົາ. ຫນ້າທໍາອິດ, Li et al. 30 ໄດ້ປະເມີນຜົນກະທົບຂອງ GLU ແລະ xylose ແລະສັງເກດເຫັນລະດັບ lipid ທີ່ຄ້າຍຄືກັບຂອງພວກເຮົາໃນອັດຕາເພີ່ມ 8%. ຂໍ້ມູນຂອງ FA ບໍ່ໄດ້ລາຍລະອຽດແລະປະກອບດ້ວຍ SFA ສ່ວນໃຫຍ່, ແຕ່ບໍ່ມີຄວາມແຕກຕ່າງລະຫວ່າງສອງ້ໍາຕານຫຼືເມື່ອພວກເຂົາຖືກນໍາສະເຫນີພ້ອມໆກັນ30. ນອກຈາກນັ້ນ, Cohn et al. 41 ບໍ່ໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນຜົນກະທົບຂອງ 20% GLU, SUC, FRU ແລະ GAL ຕໍ່ກັບອາຫານໄກ່ຕໍ່ໂປຼໄຟລ໌ FA ທີ່ກ່ຽວຂ້ອງ. spectra ເຫຼົ່ານີ້ແມ່ນໄດ້ມາຈາກດ້ານວິຊາການແທນທີ່ຈະ replicates ທາງຊີວະພາບ, ເຊິ່ງ, ຕາມການອະທິບາຍໂດຍຜູ້ຂຽນ, ອາດຈະຈໍາກັດການວິເຄາະສະຖິຕິ. ນອກຈາກນັ້ນ, ການຂາດການຄວບຄຸມ iso-້ໍາຕານ (ການນໍາໃຊ້ CEL) ຈໍາກັດການຕີຄວາມຫມາຍຂອງຜົນໄດ້ຮັບ. ບໍ່ດົນມານີ້, ສອງການສຶກສາໂດຍ Nugroho RA et al. ສະແດງໃຫ້ເຫັນຄວາມຜິດປົກກະຕິໃນ FA spectra42,43. ໃນການສຶກສາຄັ້ງທໍາອິດ, Nugroho RA et al. 43 ໄດ້ທົດສອບຜົນກະທົບຂອງການເພີ່ມ FRU ເຂົ້າໃນອາຫານເມັດປາມດອງ. ຂໍ້ມູນ FA ຂອງຕົວອ່ອນຜົນໄດ້ຮັບສະແດງໃຫ້ເຫັນເຖິງລະດັບ PUFA ສູງຜິດປົກກະຕິ, ຫຼາຍກວ່າ 90% ແມ່ນມາຈາກອາຫານທີ່ມີ 10% FRU (ຄ້າຍຄືກັນກັບການສຶກສາຂອງພວກເຮົາ). ເຖິງແມ່ນວ່າອາຫານນີ້ປະກອບດ້ວຍເມັດປາທີ່ອຸດົມສົມບູນ PUFA, ລາຍງານມູນຄ່າ FA profile ຂອງຕົວອ່ອນໃນອາຫານຄວບຄຸມທີ່ປະກອບດ້ວຍ 100% PCM ຫມັກແມ່ນບໍ່ສອດຄ່ອງກັບ profile ໃດໆທີ່ໄດ້ລາຍງານກ່ອນຫນ້ານີ້, ໂດຍສະເພາະລະດັບຜິດປົກກະຕິຂອງ C18: 3n3 ຂອງ 17.77. ± 1.67% ແລະ 26.08 ± 0.20% ສໍາລັບອາຊິດ linoleic conjugated (C18:2n6t), isomer ຫາຍາກຂອງອາຊິດ linoleic. ການສຶກສາຄັ້ງທີສອງໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນຜົນໄດ້ຮັບທີ່ຄ້າຍຄືກັນລວມທັງ FRU, GLU, MAL ແລະ SUC42 ໃນອາຫານເມັດປາມດອງ. ການສຶກສາເຫຼົ່ານີ້, ຄືກັນກັບພວກເຮົາ, ຊີ້ໃຫ້ເຫັນຄວາມຫຍຸ້ງຍາກທີ່ຮ້າຍແຮງໃນການປຽບທຽບຜົນໄດ້ຮັບຈາກການທົດລອງອາຫານຕົວອ່ອນ BSF, ເຊັ່ນ: ການເລືອກການຄວບຄຸມ, ການໂຕ້ຕອບກັບແຫຼ່ງທາດອາຫານອື່ນໆ, ແລະວິທີການວິເຄາະ FA.
ໃນລະຫວ່າງການທົດລອງ, ພວກເຮົາສັງເກດເຫັນວ່າສີແລະກິ່ນຂອງ substrate ໄດ້ແຕກຕ່າງກັນຂຶ້ນກັບອາຫານທີ່ນໍາໃຊ້. ນີ້ຊີ້ໃຫ້ເຫັນວ່າຈຸລິນຊີອາດຈະມີບົດບາດໃນຜົນໄດ້ຮັບທີ່ສັງເກດເຫັນຢູ່ໃນຊັ້ນຍ່ອຍແລະລະບົບຍ່ອຍອາຫານຂອງຕົວອ່ອນ. ໃນຄວາມເປັນຈິງ, monosaccharides ແລະ disaccharides ແມ່ນ metabolised ໄດ້ຢ່າງງ່າຍດາຍໂດຍ colonizing ຈຸລິນຊີ. ການບໍລິໂພກນ້ໍາຕານທີ່ລະລາຍຢ່າງໄວວາໂດຍຈຸລິນຊີອາດຈະເຮັດໃຫ້ການປ່ອຍຜະລິດຕະພັນການເຜົາຜະຫລານຂອງຈຸລິນຊີໃນຈໍານວນຫຼວງຫຼາຍເຊັ່ນ: ເອທານອນ, ອາຊິດ lactic, ອາຊິດໄຂມັນສັ້ນ (ເຊັ່ນ: ອາຊິດອາຊິດອາຊິດ, ອາຊິດ propionic, ອາຊິດ butyric) ແລະຄາບອນໄດອອກໄຊ 44. ບາງທາດປະສົມເຫຼົ່ານີ້ອາດຈະຮັບຜິດຊອບຕໍ່ຜົນກະທົບທີ່ເປັນພິດທີ່ຕາຍແລ້ວຕໍ່ຕົວອ່ອນຍັງສັງເກດເຫັນໂດຍ Cohn et al.41 ພາຍໃຕ້ເງື່ອນໄຂການພັດທະນາທີ່ຄ້າຍຄືກັນ. ຕົວຢ່າງ, ເອທານອນເປັນອັນຕະລາຍຕໍ່ແມງໄມ້45. ການປ່ອຍອາຍພິດຄາບອນໄດອອກໄຊເປັນຈໍານວນຫຼວງຫຼາຍອາດຈະເຮັດໃຫ້ການສະສົມຂອງມັນຢູ່ດ້ານລຸ່ມຂອງຖັງ, ເຊິ່ງອາດຈະເຮັດໃຫ້ບັນຍາກາດຂອງອົກຊີເຈນຂາດແຄນຖ້າການໄຫຼວຽນຂອງອາກາດບໍ່ອະນຸຍາດໃຫ້ປ່ອຍມັນ. ກ່ຽວກັບ SCFAs, ຜົນກະທົບຂອງແມງໄມ້, ໂດຍສະເພາະແມ່ນ H. illucens, ຍັງມີຄວາມເຂົ້າໃຈບໍ່ດີ, ເຖິງແມ່ນວ່າອາຊິດ lactic, ອາຊິດ propionic, ແລະອາຊິດ butyric ໄດ້ຖືກສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າເປັນພິດໃນ Callosobruchus maculatus (Fabricius 1775)46. ໃນ Drosophila melanogaster Meigen 1830, SCFAs ເຫຼົ່ານີ້ແມ່ນເຄື່ອງຫມາຍ olfactory ທີ່ນໍາພາແມ່ຍິງໄປຫາສະຖານທີ່ oviposition, ແນະນໍາບົດບາດທີ່ເປັນປະໂຫຍດໃນການພັດທະນາຕົວອ່ອນ47. ຢ່າງໃດກໍ່ຕາມ, ອາຊິດ acetic ຖືກຈັດປະເພດເປັນສານອັນຕະລາຍແລະສາມາດຍັບຍັ້ງການພັດທະນາຂອງຕົວອ່ອນໄດ້ຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ. ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, lactate ທີ່ມາຈາກຈຸລິນຊີໄດ້ຖືກພົບເຫັນວ່າມີຜົນຕໍ່ຕ້ານ microbes ລໍາໄສ້ທີ່ຮຸກຮານໃນ Drosophila48. ນອກຈາກນັ້ນ, ຈຸລິນຊີໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານຍັງມີບົດບາດໃນການຍ່ອຍອາຫານຂອງ CH ໃນແມງໄມ້49. ຜົນກະທົບທາງດ້ານສະລີລະວິທະຍາຂອງ SCFAs ກ່ຽວກັບຈຸລິນຊີໃນລໍາໄສ້, ເຊັ່ນອັດຕາການໃຫ້ອາຫານແລະການສະແດງອອກຂອງ gene, ໄດ້ຖືກອະທິບາຍໄວ້ໃນ vertebrates 50 . ພວກມັນຍັງອາດຈະມີຜົນກະທົບ trophic ກ່ຽວກັບຕົວອ່ອນ H. illucens ແລະອາດຈະປະກອບສ່ວນເຂົ້າໃນລະບຽບການຂອງ FA profile. ການສຶກສາກ່ຽວກັບຜົນກະທົບທາງໂພຊະນາການຂອງຜະລິດຕະພັນການຫມັກຈຸລິນຊີເຫຼົ່ານີ້ຈະຊີ້ແຈງຜົນກະທົບຂອງເຂົາເຈົ້າກ່ຽວກັບໂພຊະນາການ H. illucens ແລະເປັນພື້ນຖານສໍາລັບການສຶກສາໃນອະນາຄົດກ່ຽວກັບຈຸລິນຊີທີ່ເປັນປະໂຫຍດຫຼືເປັນອັນຕະລາຍໃນແງ່ຂອງການພັດທະນາແລະມູນຄ່າຂອງ substrates FA ອຸດົມສົມບູນ. ໃນເລື່ອງນີ້, ບົດບາດຂອງຈຸລິນຊີໃນຂະບວນການຍ່ອຍອາຫານຂອງແມງໄມ້ທີ່ປູກຝັງແມ່ນໄດ້ຖືກສຶກສາຫຼາຍຂຶ້ນ. ແມງໄມ້ເລີ່ມຖືກເບິ່ງວ່າເປັນເຄື່ອງປະຕິກອນຊີວະພາບ, ສະຫນອງເງື່ອນໄຂ pH ແລະອົກຊີເຈນທີ່ອໍານວຍຄວາມສະດວກໃຫ້ແກ່ການພັດທະນາຂອງຈຸລິນຊີທີ່ຊ່ຽວຊານໃນການຍ່ອຍສະຫຼາຍຫຼືການລ້າງສານພິດຂອງສານອາຫານທີ່ມີຄວາມຫຍຸ້ງຍາກສໍາລັບແມງໄມ້ທີ່ຈະຍ່ອຍ 51. ບໍ່ດົນມານີ້, Xiang et al.52 ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າ, ສໍາລັບການຍົກຕົວຢ່າງ, inoculation ຂອງສິ່ງເສດເຫຼືອຂອງອິນຊີທີ່ມີສ່ວນປະສົມຂອງເຊື້ອແບັກທີເຣັຍອະນຸຍາດໃຫ້ CF ດຶງດູດເຊື້ອແບັກທີເຣັຍພິເສດໃນການຍ່ອຍສະຫຼາຍຂອງ lignocellulose, ປັບປຸງການເຊື່ອມໂຊມຂອງມັນຢູ່ໃນ substrate ເມື່ອທຽບກັບ substrate ທີ່ບໍ່ມີຕົວອ່ອນ.
ສຸດທ້າຍ, ກ່ຽວກັບການນໍາໃຊ້ທີ່ເປັນປະໂຫຍດຂອງສິ່ງເສດເຫຼືອຂອງອິນຊີໂດຍ H. illucens, ອາຫານ CEL ແລະ SUC ໄດ້ຜະລິດຕົວອ່ອນທີ່ສູງທີ່ສຸດຕໍ່ມື້. ນີ້ ໝາຍ ຄວາມວ່າເຖິງວ່າຈະມີນ້ ຳ ໜັກ ສຸດທ້າຍຂອງແຕ່ລະບຸກຄົນ, ນ້ ຳ ໜັກ ຕົວອ່ອນທັງ ໝົດ ທີ່ຜະລິດຢູ່ເທິງຊັ້ນຍ່ອຍທີ່ປະກອບດ້ວຍ CH ທີ່ບໍ່ຍ່ອຍສາມາດປຽບທຽບໄດ້ກັບອາຫານ homosaccharide ທີ່ມີ monosaccharides ແລະ disaccharides. ໃນການສຶກສາຂອງພວກເຮົາ, ມັນເປັນສິ່ງສໍາຄັນທີ່ຈະສັງເກດວ່າລະດັບຂອງສານອາຫານອື່ນໆແມ່ນພຽງພໍເພື່ອສະຫນັບສະຫນູນການຂະຫຍາຍຕົວຂອງປະຊາກອນຕົວອ່ອນແລະການເພີ່ມ CEL ຄວນຈໍາກັດ. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ອົງປະກອບສຸດທ້າຍຂອງຕົວອ່ອນແມ່ນແຕກຕ່າງກັນ, ເນັ້ນຫນັກເຖິງຄວາມສໍາຄັນຂອງການເລືອກຍຸດທະສາດທີ່ເຫມາະສົມສໍາລັບການ valorizing ແມງໄມ້. ຕົວອ່ອນ CEL ທີ່ລ້ຽງດ້ວຍອາຫານທັງຫມົດແມ່ນເຫມາະສົມກວ່າທີ່ຈະໃຊ້ເປັນອາຫານສັດເນື່ອງຈາກປະລິມານໄຂມັນຕ່ໍາແລະລະດັບອາຊິດ lauric ຕ່ໍາ, ໃນຂະນະທີ່ຕົວອ່ອນທີ່ລ້ຽງດ້ວຍອາຫານ SUC ຫຼື MAL ຕ້ອງການ defatting ໂດຍການກົດເພື່ອເພີ່ມມູນຄ່າຂອງນ້ໍາມັນ, ໂດຍສະເພາະໃນຊີວະພາບ. ຂະແໜງ. LAC ແມ່ນພົບເຫັນຢູ່ໃນຜະລິດຕະພັນນົມໂດຍອຸດສາຫະກໍາເຊັ່ນ whey ຈາກການຜະລິດເນີຍແຂງ. ບໍ່ດົນມານີ້, ການນໍາໃຊ້ຂອງມັນ (3.5% lactose) ປັບປຸງນ້ໍາຫນັກຕົວອ່ອນສຸດທ້າຍ 53. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ອາຫານຄວບຄຸມໃນການສຶກສານີ້ປະກອບດ້ວຍເຄິ່ງຫນຶ່ງຂອງເນື້ອໃນ lipid. ດັ່ງນັ້ນ, ຜົນກະທົບດ້ານໂພຊະນາການຂອງ LAC ອາດຈະຖືກຕ້ານໂດຍການສະສົມຊີວະພາບຂອງຕົວອ່ອນຂອງ lipids ອາຫານ.
ດັ່ງທີ່ສະແດງໃຫ້ເຫັນໂດຍການສຶກສາທີ່ຜ່ານມາ, ຄຸນສົມບັດຂອງ monosaccharides ແລະ disaccharides ມີຜົນກະທົບຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຕໍ່ການເຕີບໂຕຂອງ BSFL ແລະດັດແປງໂປຣໄຟລ໌ FA ຂອງມັນ. ໂດຍສະເພາະ, LAC ເບິ່ງຄືວ່າມີບົດບາດຕ້ານສານອາຫານໃນລະຫວ່າງການພັດທະນາຕົວອ່ອນໂດຍການຈໍາກັດການມີ CH ສໍາລັບການດູດຊຶມ lipid ຈາກອາຫານ, ດັ່ງນັ້ນຈຶ່ງສົ່ງເສີມການສະສົມຊີວະພາບ UFA. ໃນສະພາບການນີ້, ມັນຈະເປັນຫນ້າສົນໃຈທີ່ຈະດໍາເນີນການ bioassays ໂດຍໃຊ້ອາຫານທີ່ປະສົມປະສານ PUFA ແລະ LAC. ຍິ່ງໄປກວ່ານັ້ນ, ບົດບາດຂອງຈຸລິນຊີ, ໂດຍສະເພາະແມ່ນບົດບາດຂອງທາດຍ່ອຍອາຫານຂອງຈຸລິນຊີ (ເຊັ່ນ: SCFAs) ທີ່ມາຈາກຂະບວນການຫມັກນ້ໍາຕານ, ຍັງເປັນຫົວຂໍ້ຄົ້ນຄ້ວາທີ່ສົມຄວນທີ່ຈະສືບສວນ.
ແມງໄມ້ໄດ້ມາຈາກອານານິຄົມ BSF ຂອງຫ້ອງທົດລອງ Functional and Evolutionary Entomology ສ້າງຕັ້ງຂຶ້ນໃນ 2017 ທີ່ Agro-Bio Tech, Gembloux, ປະເທດແບນຊິກ (ສໍາລັບລາຍລະອຽດເພີ່ມເຕີມກ່ຽວກັບວິທີການລ້ຽງດູ, ເບິ່ງ Hoc et al. 19). ສໍາລັບການທົດລອງທົດລອງ, ໄຂ່ BSF 2.0 g ໄດ້ຖືກສຸ່ມເກັບກໍາປະຈໍາວັນຈາກ cages ການປັບປຸງພັນແລະ incubated ໃນ 2.0 kg ຂອງອາຫານໄກ່ປຽກ 70% (Aveve, Leuven, ປະເທດແບນຊິກ). ຫ້າມື້ຫຼັງຈາກການຟອກ, ຕົວອ່ອນໄດ້ຖືກແຍກອອກຈາກຊັ້ນຍ່ອຍແລະນັບດ້ວຍຕົນເອງເພື່ອຈຸດປະສົງທົດລອງ. ນ້ ຳ ໜັກ ເບື້ອງຕົ້ນຂອງແຕ່ລະຊຸດໄດ້ຖືກວັດແທກ. ນ້ໍາຫນັກສ່ວນບຸກຄົນໂດຍສະເລ່ຍແມ່ນ 7.125 ± 0.41 mg, ແລະສະເລ່ຍສໍາລັບການປິ່ນປົວແຕ່ລະຄົນແມ່ນສະແດງຢູ່ໃນຕາຕະລາງເສີມ S2.
ສູດອາຫານໄດ້ຖືກດັດແປງຈາກການສຶກສາໂດຍ Barragan-Fonseca et al. 38 . ໂດຍຫຍໍ້, ການປະນີປະນອມໄດ້ຖືກພົບເຫັນລະຫວ່າງຄຸນນະພາບອາຫານດຽວກັນສໍາລັບໄກ່ຕົວອ່ອນ, ເນື້ອໃນຂອງສານແຫ້ງທີ່ຄ້າຍຄືກັນ (DM), CH ສູງ (10% ໂດຍອີງໃສ່ອາຫານສົດ) ແລະໂຄງສ້າງ, ເນື່ອງຈາກວ່າ້ໍາຕານງ່າຍດາຍແລະ disaccharides ບໍ່ມີຄຸນສົມບັດໂຄງສ້າງ. ອີງຕາມຂໍ້ມູນຂອງຜູ້ຜະລິດ (ອາຫານໄກ່, AVEVE, Leuven, ປະເທດແບນຊິກ), CH ທົດສອບ (ie ້ໍາຕານທີ່ລະລາຍ) ໄດ້ຖືກເພີ່ມແຍກຕ່າງຫາກເປັນການແກ້ໄຂນ້ໍາ autoclaved (15.9%) ໃນອາຫານທີ່ປະກອບດ້ວຍທາດໂປຼຕີນ 16.0%, lipids ທັງຫມົດ 5.0%. ອາຫານໄກ່ດິນ 11.9% ປະກອບດ້ວຍຂີ້ເທົ່າ ແລະ ເສັ້ນໃຍ 4.8%. ໃນແຕ່ລະກະປ໋ອງ 750 ມລ (17.20 × 11.50 × 6.00 ຊຕມ, AVA, Tempsee, ປະເທດແບນຊິກ), 101.9 g ຂອງ autoclaved CH solution ແມ່ນປະສົມກັບ 37.8 g ຂອງອາຫານໄກ່. ສໍາລັບແຕ່ລະຄາບອາຫານ, ເນື້ອໃນຂອງສານແຫ້ງແມ່ນ 37.0%, ລວມທັງທາດໂປຼຕີນທີ່ homogeneous (11.7%), lipids homogeneous (3.7%) ແລະ້ໍາຕານ homogeneous (26.9% ຂອງ CH ເພີ່ມ). CH ທົດສອບແມ່ນ glucose (GLU), fructose (FRU), galactose (GAL), maltose (MAL), sucrose (SUC) ແລະ lactose (LAC). ອາຫານຄວບຄຸມປະກອບດ້ວຍ cellulose (CEL), ເຊິ່ງພິຈາລະນາ indigestible ສໍາລັບຕົວອ່ອນ H. illucens 38 . ໂຕອ່ອນອາຍຸ 5 ວັນ 1 ຮ້ອຍໂຕ ໄດ້ຖືກຈັດໃສ່ໃນຖາດທີ່ພໍດີກັບຝາປິດ ທີ່ມີຮູຂຸມຂົນກວ້າງ 1 ຊຕມ ຢູ່ເຄິ່ງກາງ ແລະ ຫຸ້ມດ້ວຍຕາໜ່າງຢາງປລາສຕິກ. ແຕ່ລະຄາບອາຫານໄດ້ຖືກຊ້ໍາສີ່ຄັ້ງ.
ນ້ ຳ ໜັກ ຕົວອ່ອນໄດ້ຖືກວັດແທກສາມມື້ຫຼັງຈາກການເລີ່ມຕົ້ນຂອງການທົດລອງ. ສໍາລັບການວັດແທກແຕ່ລະຄັ້ງ, ຕົວອ່ອນ 20 ໂຕໄດ້ຖືກໂຍກຍ້າຍອອກຈາກຊັ້ນໃຕ້ດິນໂດຍໃຊ້ນ້ໍາອຸ່ນແລະ forceps ເປັນຫມັນ, ຕາກໃຫ້ແຫ້ງ, ແລະຊັ່ງນໍ້າຫນັກ (STX223, Ohaus Scout, Parsippany, USA). ຫຼັງຈາກການຊັ່ງນໍ້າຫນັກ, ຕົວອ່ອນໄດ້ຖືກສົ່ງກັບຄືນສູ່ສູນກາງຂອງ substrate. ການວັດແທກໄດ້ຖືກປະຕິບັດເປັນປົກກະຕິສາມເທື່ອຕໍ່ອາທິດຈົນກ່ວາ prepupa ທໍາອິດອອກມາ. ໃນຈຸດນີ້, ເກັບກໍາ, ນັບ, ແລະຊັ່ງນໍ້າຫນັກຕົວອ່ອນທັງຫມົດຕາມທີ່ໄດ້ອະທິບາຍກ່ອນຫນ້ານີ້. ຕົວອ່ອນຂັ້ນຕອນທີ 6 ແຍກຕ່າງຫາກ (ເຊັ່ນ: ຕົວອ່ອນສີຂາວທີ່ສອດຄ່ອງກັບຂັ້ນຕອນຂອງຕົວອ່ອນກ່ອນຂັ້ນຕອນ prepupal) ແລະ prepupae (ເຊັ່ນ: ຂັ້ນຕອນຕົວອ່ອນສຸດທ້າຍທີ່ຕົວອ່ອນ BSF ປ່ຽນເປັນສີດໍາ, ຢຸດເຊົາການໃຫ້ອາຫານ, ແລະຊອກຫາສະພາບແວດລ້ອມທີ່ເຫມາະສົມສໍາລັບ metamorphosis) ແລະເກັບຮັກສາໄວ້ທີ່ - 18°C ສໍາລັບການວິເຄາະອົງປະກອບ. ຜົນຜະລິດໄດ້ຖືກຄິດໄລ່ເປັນອັດຕາສ່ວນຂອງມະຫາຊົນທັງຫມົດຂອງແມງໄມ້ (ຕົວອ່ອນແລະ prepupae ຂອງຂັ້ນຕອນທີ 6) ທີ່ໄດ້ຮັບຕໍ່ອາຫານ (g) ກັບເວລາການພັດທະນາ (d). ຄ່າສະເລ່ຍທັງໝົດໃນຂໍ້ຄວາມແມ່ນສະແດງອອກເປັນ: mean ± SD.
ຂັ້ນຕອນຕໍ່ໄປທັງຫມົດໂດຍໃຊ້ສານລະລາຍ ( hexane (Hex), chloroform (CHCl3), ເມທານອນ (MeOH)) ໄດ້ຖືກປະຕິບັດພາຍໃຕ້ເຄື່ອງດູດຝຸ່ນແລະຈໍາເປັນຕ້ອງໃສ່ຖົງມື nitrile, ຜ້າກັນເປື້ອນແລະແວ່ນຕາຄວາມປອດໄພ.
ຕົວອ່ອນສີຂາວຖືກຕາກໃຫ້ແຫ້ງໃນເຄື່ອງອົບແຫ້ງ FreeZone6 (Labconco Corp., Kansas City, MO, USA) ເປັນເວລາ 72 ຊົ່ວໂມງ ແລະຈາກນັ້ນນຳໄປຖົມ (IKA A10, Staufen, Germany). lipids ທັງຫມົດໄດ້ຖືກສະກັດຈາກ ± 1 g ຂອງຜົງໂດຍໃຊ້ວິທີການ Folch 54. ຄວາມຊຸ່ມຊື່ນທີ່ຕົກຄ້າງຂອງແຕ່ລະຕົວຢ່າງ lyophilized ໄດ້ຖືກກໍານົດໃນຊ້ໍາກັນໂດຍໃຊ້ເຄື່ອງວິເຄາະຄວາມຊຸ່ມ (MA 150, Sartorius, Göttiggen, ເຢຍລະມັນ) ເພື່ອແກ້ໄຂ lipid ທັງຫມົດ.
lipids ທັງຫມົດໄດ້ຖືກ transesterified ພາຍໃຕ້ເງື່ອນໄຂທີ່ເປັນກົດເພື່ອໃຫ້ໄດ້ອາຊິດໄຂມັນ methyl esters. ໂດຍຫຍໍ້, ປະມານ 10 mg lipids/100 µl CHCl3 solution (100 µl) ໄດ້ຖືກລະເຫີຍດ້ວຍໄນໂຕຣເຈນໃນທໍ່ Pyrex © 8 ml (SciLabware – DWK Life Sciences, London, UK). ທໍ່ໄດ້ຖືກວາງໄວ້ໃນ Hex (0.5 ml) (PESTINORM®SUPRATRACE n-Hexane > 95% ສໍາລັບການວິເຄາະຮ່ອງຮອຍທາງອິນຊີ, VWR Chemicals, Radnor, PA, USA) ແລະການແກ້ໄຂ Hex/MeOH/BF3 (20/25/55) (0.5) ມລ) ໃນອາບນ້ໍາທີ່ອຸນຫະພູມ 70 ° C ເປັນເວລາ 90 ນາທີ. ຫຼັງຈາກເຮັດໃຫ້ເຢັນ, 10% aqueous solution H2SO4 (0.2 ml) ແລະ saturated NaCl solution (0.5 ml) ໄດ້ຖືກເພີ່ມ. ປະສົມທໍ່ແລະຕື່ມຂໍ້ມູນໃສ່ດ້ວຍ Hex ສະອາດ (8.0 mL). ບາງສ່ວນຂອງໄລຍະເທິງໄດ້ຖືກໂອນໄປຫາ vial ແລະວິເຄາະໂດຍ chromatography ອາຍແກັສທີ່ມີເຄື່ອງກວດຈັບ flame ionization (GC-FID). ຕົວຢ່າງໄດ້ຖືກວິເຄາະໂດຍໃຊ້ Trace GC Ultra (Thermo Scientific, Waltham, MA, USA) ທີ່ຕິດຕັ້ງດ້ວຍຫົວສີດແຍກ/ບໍ່ແຍກ (240 °C) ໃນໂໝດແຍກ (ການໄຫຼແຍກ: 10 mL/ນາທີ), ຖັນ Stabilwax®-DA ( 30 m, 0.25 mm id, 0.25 μm, Restek Corp., Bellefonte, PA, USA) ແລະ FID (250 °C). ໂຄງການອຸນຫະພູມໄດ້ຖືກກໍານົດໄວ້ດັ່ງຕໍ່ໄປນີ້: 50 ° C ສໍາລັບ 1 ນາທີ, ເພີ່ມຂຶ້ນເປັນ 150 ° C ຢູ່ທີ່ 30 ° C / ນາທີ, ເພີ່ມຂຶ້ນເປັນ 240 ° C ຢູ່ທີ່ 4 ° C / ນາທີແລະສືບຕໍ່ຢູ່ທີ່ 240 ° C ສໍາລັບ 5 ນາທີ. Hex ໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ເປັນເປົ່າແລະມາດຕະຖານອ້າງອິງປະກອບດ້ວຍ 37 ອາຊິດໄຂມັນ methyl esters (Supelco 37-component FAMEmix, Sigma-Aldrich, Overijse, Belgium) ຖືກນໍາໃຊ້ສໍາລັບການກໍານົດ. ການກໍານົດອາຊິດໄຂມັນບໍ່ອີ່ມຕົວ (UFAs) ໄດ້ຖືກຢືນຢັນໂດຍ GC ສອງມິຕິທີ່ສົມບູນແບບ (GC × GC-FID) ແລະການປະກົດຕົວຂອງ isomers ໄດ້ຖືກກໍານົດຢ່າງຖືກຕ້ອງໂດຍການປັບຕົວເລັກນ້ອຍຂອງວິທີການຂອງ Ferrara et al. 55. ລາຍລະອຽດຂອງເຄື່ອງມືສາມາດພົບໄດ້ໃນຕາຕະລາງເສີມ S3 ແລະຜົນໄດ້ຮັບໃນຮູບເສີມ S5.
ຂໍ້ມູນໄດ້ຖືກນໍາສະເຫນີໃນຮູບແບບຕາຕະລາງ Excel (Microsoft Corporation, Redmond, WA, USA). ການວິເຄາະທາງສະຖິຕິໄດ້ຖືກປະຕິບັດໂດຍການ R Studio (ເວີຊັນ 2023.12.1+402, Boston, USA) 56 . ຂໍ້ມູນກ່ຽວກັບນ້ໍາຂອງຕົວອ່ອນ, ເວລາການພັດທະນາແລະຜະລິດຕະພັນໄດ້ຖືກຄາດຄະເນໂດຍນໍາໃຊ້ຮູບແບບເສັ້ນ (LM) (ຄໍາສັ່ງ “lm”, R package “stats” 56 ) ຍ້ອນວ່າພວກເຂົາເຫມາະກັບການແຜ່ກະຈາຍ Gaussian. ອັດຕາການຢູ່ລອດໂດຍການວິເຄາະຕົວແບບ binomial ແມ່ນການຄາດຄະເນໂດຍນໍາໃຊ້ຕົວແບບເສັ້ນທົ່ວໄປ (GLM) (ຄໍາສັ່ງ “glm”, ຊຸດ R “lme4” 57 ). Normality ແລະ homoscedasticity ໄດ້ຖືກຢືນຢັນໂດຍໃຊ້ Shapiro test (command “shapiro.test”, R package “stats” 56) ແລະການວິເຄາະຂໍ້ມູນການປ່ຽນແປງ (command betadisper, R package “vegan” 58). ຫຼັງຈາກການວິເຄາະຄູ່ຂອງ p-values ທີ່ສໍາຄັນ (p <0.05) ຈາກການທົດສອບ LM ຫຼື GLM, ຄວາມແຕກຕ່າງທີ່ສໍາຄັນລະຫວ່າງກຸ່ມໄດ້ຖືກກວດພົບໂດຍໃຊ້ການທົດສອບ EMM (ຄໍາສັ່ງ "emmeans", R package "emmeans" 59).
Spectra FA ຄົບຖ້ວນໄດ້ຖືກປຽບທຽບໂດຍໃຊ້ການວິເຄາະການປ່ຽນແປງແບບຫຼາຍຕົວແປຂອງການປ່ຽນແປງ (ເຊັ່ນ: permMANOVA; ຄໍາສັ່ງ "adonis2", R package "vegan" 58) ໂດຍໃຊ້ຕາຕະລາງໄລຍະ Euclidean ແລະ 999 permutations. ນີ້ຊ່ວຍກໍານົດອາຊິດໄຂມັນທີ່ໄດ້ຮັບອິດທິພົນຈາກລັກສະນະຂອງຄາໂບໄຮເດດອາຫານ. ຄວາມແຕກຕ່າງທີ່ສໍາຄັນໃນໂປຣໄຟລ໌ FA ໄດ້ຖືກວິເຄາະຕື່ມອີກໂດຍການປຽບທຽບຄູ່. ຫຼັງຈາກນັ້ນ, ຂໍ້ມູນໄດ້ຖືກເບິ່ງເຫັນໂດຍໃຊ້ການວິເຄາະອົງປະກອບຕົ້ນຕໍ (PCA) (ຄໍາສັ່ງ "PCA", R package "FactoMineR" 60). FA ທີ່ຮັບຜິດຊອບຕໍ່ຄວາມແຕກຕ່າງເຫຼົ່ານີ້ໄດ້ຖືກກໍານົດໂດຍການຕີຄວາມຫມາຍຂອງວົງກົມທີ່ກ່ຽວຂ້ອງ. ຜູ້ສະຫມັກເຫຼົ່ານີ້ໄດ້ຮັບການຢືນຢັນໂດຍໃຊ້ການວິເຄາະທາງດຽວຂອງຄວາມແຕກຕ່າງ (ANOVA) (ຄໍາສັ່ງ "aov", R package "stats" 56) ຕິດຕາມດ້ວຍການທົດສອບ post hoc ຂອງ Tukey (ຄໍາສັ່ງ TukeyHSD, R package "stats" 56). ກ່ອນທີ່ຈະວິເຄາະ, ຄວາມປົກກະຕິໄດ້ຖືກປະເມີນໂດຍໃຊ້ການທົດສອບ Shapiro-Wilk, homoscedasticity ໄດ້ຖືກກວດສອບໂດຍໃຊ້ການທົດສອບ Bartlett (ຄໍາສັ່ງ "bartlett.test", R package "stats" 56), ແລະວິທີການ nonparametric ຖືກນໍາໃຊ້ຖ້າຫາກວ່າທັງສອງສົມມຸດຕິຖານບໍ່ໄດ້ບັນລຸໄດ້. . ການວິເຄາະໄດ້ຖືກປຽບທຽບ (ຄໍາສັ່ງ “kruskal.test”, R package “stats” 56 ), ແລະຫຼັງຈາກນັ້ນການທົດສອບ post hoc ຂອງ Dunn ໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ (ຄໍາສັ່ງ dunn.test, R package “dunn.test” 56 ).
ສະບັບສຸດທ້າຍຂອງຫນັງສືໃບລານໄດ້ຖືກກວດສອບໂດຍໃຊ້ Grammarly Editor ເປັນຕົວອ່ານພາສາອັງກິດ (Grammarly Inc., San Francisco, California, USA) 61 .
ຊຸດຂໍ້ມູນທີ່ສ້າງຂຶ້ນແລະວິເຄາະໃນລະຫວ່າງການສຶກສາໃນປະຈຸບັນແມ່ນມີໃຫ້ຈາກຜູ້ຂຽນທີ່ສອດຄ້ອງກັນຕາມຄໍາຮ້ອງຂໍທີ່ສົມເຫດສົມຜົນ.
Kim, SW, et al. ຕອບສະຫນອງຄວາມຕ້ອງການຂອງໂລກສໍາລັບທາດໂປຼຕີນຈາກອາຫານ: ສິ່ງທ້າທາຍ, ໂອກາດ, ແລະຍຸດທະສາດ. Annals of Animal Biosciences 7, 221–243 (2019).
Caparros Megido, R., et al. ການທົບທວນຄືນສະຖານະພາບແລະຄວາມສົດໃສດ້ານຂອງການຜະລິດແມງໄມ້ທີ່ກິນໄດ້ຂອງໂລກ. Entomol. ປະຖົມມະການ 44, (2024).
Rehman, K. ur, et al. Black soldier fly (Hermetia illucens) ເປັນເຄື່ອງມືປະດິດສ້າງທີ່ມີທ່າແຮງ ແລະເປັນມິດກັບສິ່ງແວດລ້ອມສໍາລັບການຈັດການສິ່ງເສດເຫຼືອອິນຊີ: ການທົບທວນຄືນໂດຍຫຍໍ້. ການຄົ້ນຄວ້າການຄຸ້ມຄອງສິ່ງເສດເຫຼືອ 41, 81–97 (2023).
Skala, A., et al. ການລ້ຽງຍ່ອຍມີອິດທິພົນຕໍ່ການຈະເລີນເຕີບໂຕ ແລະ ສະຖານະພາບມະຫາພາກຂອງຕົວອ່ອນຂອງແມງວັນທະຫານສີດຳທີ່ຜະລິດໂດຍອຸດສາຫະກຳ. ວິທະຍາສາດ. ສະບັບທີ 10, 19448 (2020).
Shu, MK, et al. ຄຸນສົມບັດຕ້ານເຊື້ອຈຸລິນຊີຂອງສານສະກັດຈາກນ້ຳມັນຈາກຕົວອ່ອນຂອງແມງວັນສີດຳທີ່ລ້ຽງຢູ່ໜ້າເຂົ້າຈີ່. ວິທະຍາສາດອາຫານສັດ, 64, (2024).
Schmitt, E. and de Vries, W. (2020). ຜົນປະໂຫຍດທີ່ມີທ່າແຮງຂອງການນໍາໃຊ້ຝຸ່ນແມງວັນສປປລສີດໍາເປັນການແກ້ໄຂດິນສໍາລັບການຜະລິດອາຫານແລະຫຼຸດຜ່ອນຜົນກະທົບຕໍ່ສິ່ງແວດລ້ອມ. ຄວາມຄິດເຫັນໃນປະຈຸບັນ. ສີຂຽວຍືນຍົງ. 25, 100335 (2020).
Franco A. et al. ທະຫານດຳບິນ lipids—ເປັນແຫຼ່ງນະວັດຕະກໍາ ແລະ ຍືນຍົງ. ການພັດທະນາແບບຍືນຍົງ, Vol. 13, (2021).
Van Huis, A. ແມງໄມ້ເປັນສະບຽງອາຫານແລະອາຫານ, ພາກສະຫນາມທີ່ພົ້ນເດັ່ນຂື້ນໃນກະສິກໍາ: ການທົບທວນຄືນ. J. Insect Feed 6, 27–44 (2020).
Kachor, M., Bulak, P., Prots-Petrikha, K., Kirichenko-Babko, M., ແລະ Beganovsky, A. ການນໍາໃຊ້ຕ່າງໆຂອງທະຫານສີດໍາບິນໃນອຸດສາຫະກໍາແລະການກະສິກໍາ - ການທົບທວນຄືນ. ຊີວະສາດ 12, (2023).
Hock, B., Noel, G., Carpentier, J., Francis, F., ແລະ Caparros Megido, R. ການເພີ່ມປະສິດທິພາບຂອງການຂະຫຍາຍພັນທຽມຂອງ Hermetia illucens. PLOS ONE 14, (2019).
ເວລາປະກາດ: 25-12-2024